Содержание

ДЕРМАТОФИТИЯ (ЛИШАЙ) — Ветеринарная служба №1 на Ленинском 106

Дерматофиты – одна из разновидностей грибов, которые вызывают поражения поверхностных слоев кожи и других кератинизированных тканей, таких как когти и шерстный покров.
Существует три вида дерматофитов, которые вызывают кожные заболевания у мелких животных: Microsporum canis, Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes.


M. canis – самая частая причина дерматофитии у кошек и собак. Этот дерматофит живет на кошке или собаке, но может находиться в окружающей среде до 18 месяцев! 

Кроме того, некоторые животные могут быть носителями спор и не проявлять никаких кожных поражений. M. gypseum обитает в почве, T. mentagrophytes чаще переносят грызуны. 

Случаи дерматофитии зависят от климата и наличия источника заражения. В жарком, влажном климате наблюдается более высокая частота случаев дерматофитии, так же, как и других грибковых заболеваний.

Животные, живущие в тесном контакте друг с другом (питомники или приюты), копающиеся в земле или охотящиеся на грызунов, имют больший риск заражения дерматофитией. Некоторые породы кошек и собак могут иметь генетическую предрасположенность к заболеваниям, вызванным M. canis: йоркширский терьер, гималайские и персидские кошки. Дерматофиты также представляют собой опасность для здоровья людей, поскольку могут передаваться и человеку, особенно людям со сниженным иммунитетом, пожилым и детям.

Молодые животные и животные с иммуносупрессией поражаются чаще. Заражение происходит при непосредственном контакте с инфицированным носителем или через предметы ухода. Инкубационный период варьирует от 4 до 30 дней. 

 СИМПТОМЫ

Клинические признаки дерматофитии могут иметь значительные отличия в каждом случае. Лишь иногда у кошек или собак наблюдаются классические «лишайные» округлые области без волос с шелушением по краю. Поражения обычно распространяются от центра к периферии, часто с восстановлением волос по центру. Зуд может быть разной степени выраженности или отсутствовать. Возможна генерализация заболевания на большую поверхность кожи.

Так как дерматофиты почти всегда поражают волосяные фолликулы, первыми клиническим признаком часто является просто безволосый участок кожи. Может быть, а может и не быть воспалительных или других явных изменений кожи. Иногда бывают тяжелые поражения кожи, включая пятнистые безволосые участки со струпом (корочками), чешуйками и папулами (сыпь), которые могут охватывать все тело. 

Небольшие поражения могут быть разного размера или формы, располагаться на любой части тела у собаки или кошки, но чаще наблюдаются на голове и ногах.

Другие клинические признаки включают наличие керионов и онихомикоз. Керион представляет собой узелковую дермальную реакцию, которая сопровождается выраженным воспалением с образованием язв и дренирующих каналов, чаще встречается при инфицировании М. Gypseum. Керионы часто наблюдаются в области морды и конечностей, но могут быть и в других местах.
Онихомикоз (поражение когтя) встречается редко, в основном при трихофитии. Клинически проявляется в виде бесформенных ломких ногтей.

 

 ДИАГНОСТИКА

Поскольку заболевание может проявляться многообразно, диагноз не может быть поставлен на основании только внешнего осмотра. Одно или более лабораторных исследований необходимы для диагностики дерматофитии. 
Наиболее точным методом диагностики является посев на среды с последующей микроскопией выросшей культуры для постановки окончательного диагноза. 
Иногда требуется гистологическое исследование кожи, что может помочь в постановке диагноза. 
В некоторых случаях споры дерматофитов могут быть обнаружены при микроскопическом исследовании пораженных волос. Если споры обнаружены (40-70% случаев), то этого достаточно для постановки диагноза. 


Волос, пораженный дерматофитами при микроскопии.

 

Недорогой, но лишь отчасти достоверный тест – использование лампы Вуда. Только приблизительно 50% случаев, вызванных M. canis, может давать свечение стержня волоса характерным яблочно-зеленым светом. Несмотря на результат исследования лампой Вуда, необходимо выполнить посев для уточнения диагноза или найти споры грибов в пораженном волосе под микроскопом.

 ЛЕЧЕНИЕ

Цель лечения заключается в минимизации контаминирования окружающей среды и заражения дерматофитией человека, а также ускорения выздоровления животного.

Наружные обработки. Единичные поражения у собак и реже кошек можно лечить местными противогрибковыми средствами с миконазолом, клотримазолом, кетоконазолом, энилконазолом (Низорал, Имаверол, Лайм-Сульфур).

Длинношерстным животным нужно подстричь шерсть, соблюдая осторожность, чтоб не травмировать кожу. Обработки проводят 2 раза в неделю вплоть до выздоровления.
Для кошек недостаточно одного лишь местного лечения, для них в любом случае необходима системная терапия.
Собакам с множественными поражениями также требуется системное лечение.

Системная терапия.
Наиболее часто применяемыми препаратами являются кетоконазол (низорал), итраконазол, тербинафин, флуконазол. Несколько реже в связи с относительно более высокой токсичностью применяется гризеофульвин. Кошки могут оказаться более чувствительны к кетоконазолу и гризеофильвину, для них предпочтительней итраконазол, тербинафин и флуконазол. 

Для эффективности лечения дерматофитии решающее значение имеет продолжительность терапии. Лечение обычно продолжается минимум 6 недель, закончить прием препаратов можно спустя 2-3 недели после получения отрицательных результатов исследования.

Противогрибковые вакцины, вопреки распространенному мнению, не имеют доказанной эффективности при лечении дерматофитии у мелких домашних животных и не предотвращают заражение дерматофитами. Их можно использовать лишь в качестве вспомогательного средства терапии. Основным побочным эффектом являются стерильные абсцессы в месте введения.

 

 ДЕЗИНФЕКЦИЯ

Для профилактики распространения инфекции эффективна тщательная уборка помещения при помощи пылесоса, влажная уборка, использование противогрибковых средств (Имаверол, гипохлорит натрия, разведенный 1:10 – хлорка). Ультрафиолетовое облучение также губительно для дерматофитов и удобно для дезинфекции мягкой мебели и труднодоступных участков.

 Данная информация не является руководством к самостоятельной диагностике и лечению.
В случае болезни мы рекомендуем обращаться за помощью к специалистам. 
Ответственности за летальный исход в результате неверной диагностики и самолечения не несем.

 

 

Дерматофитии-у-животных

Дерматофитии (лишаи) довольно растространенная патология у животных, особенно у маленьких котят. Случаи возникновения дерматофитии зависят от наличия источника заражения и условий содержания животных. Так высокая влажность и температура могут провоцировать более частые случаи возникновения грибковых заболеваний. Скученное содержание животных (на рынках,  в приютах и питомниках), тесные контакты друг с другом, общение с грызунами либо охота на них и рытье  в земле являются предрасполагающими факторами для более частых случаев возникновения грибковых заболеваний.

Существует три вида дерматофитов, которые вызывают кожные заболевания у мелких животных: Microsporum canis, Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes. При этом поражатся может как сама кожа, особенно поверхностные слои, так и её производные – шерсть и когти.

Наиболее часто у животных выявляют Microsporum canis. Этот дерматофит живет на кошке или собаке, но его споры могут сохраняться в окружающей среде до 18 месяцев. Некоторые животные могут являться носителями спор и при этом у них не выявляются никакие кожные  поражения.

Microsporum gypseum обитает в почве и неблагополучные территории могут длительное время оставаться источником заболевания. Источником заражения Trichophyton mentagrophytes обычно являются грызуны.
Некоторые породы собак и кошек имеют генетическую предрасположенность к заболеваниям, вызванным M. canis: йоркширский терьер, гималайские и персидские кошки.

Дерматофиты также представляют особую опасность для здоровья людей и могут вызывать кожные поражения, особенно у детей, людей со сниженным иммунитетом и пожилых.

Клинические проявления дерматофитии очень разнообразны и могут проявляться как классическими безволосыми очагами округлой формы с признаками воспаления кожи или без них, так и в виде мелкоочаговых безволосых участков со струпом (корочками), чешуйками и папулами (сыпь) по всему телу животного. Поражения могут располагаться на любом участке тела, но чаще поражаются мордочка, ушные раковины и лапы. Иногда встречаются у животных «дерматофитные керионы» — это локализованные узелковые поражения, которые возникают в результате иммунного ответа организма на внедрение дерматофитов.

Поскольку проявления дерматофитии могут быть очень разнообразны, то и для постановки окончательного диагноза используются несколько методов лабораторной диагностики помимо клинического осмотра.

Недорогой, но лишь отчасти достоверный способ диагностики – люминисцентная диагностика лампой Вуда. Важно помнить, что  лишь 50% случаев заболевания, вызванных M. Canis будут иметь изумрудное свечение шерсти в лучах лампы. Однако иметь специфическое свечение могут и различные примеси и загрязнения на поверхности шерсти. Поэтому в клинике «Дружочек»  мы обязательно проверяем шерсть от таких животных путем проведения трихоскопии для выявления спор в пораженных волосах, которые выявляются в 40-70% случаев и этого может быть достаточно для постановки диагноза.

На?боле? достоверным способом диагностики является посев шерсти на специальные среды с последующим микроскопированием выросшей культуры, для установления вида дерматофита.

Лечение зависит от тяжести проявления заболевания, возраста животного, состояния его здоровья и условий обитания. У молодых здоровых животных заболевание может самостоятельно пройти.  Однако во многих случаях необходима достаточно агрессивная терапия. При лечение используются  специальные противогрибковые препараты, как для системного, так и для местного применения.

Лечению дерматофитии подвергаются и все животные, контактировавшие с заболевшим и окружающая среда.
Если предполагается, что в доме есть животное-носитель спор, то в обязательном порядке его необходимо выявить путем посева на специальную среду, что также может быть проведено в ветклинике «Дружочек». Животные с отрицательным посевом должны быть по возможности изолированы от пораженных.
Длинношерстные животные, для облегчения местных обработок и для снижения разноса спор, должны быть пострижены.
Животные с кожными поражениями в обязательном порядке должны получать системное лечение противогрибковыми препаратами внутрь.

Также хотелось бы отметить, что вакцины от дерматофитий оказались неэффективными в проводимых исследованиях ни для лечения, ни для профилактики, и поэтому не используются в нашей клинике.

Очень важным фактором в лечении дерматофитии является обработка среды, особенно при поражении M. Canis. Твердые поверхности можно обрабатывать горячим хозяйственным раствором извести 1/10 (5% хлорка) или раствором хлоргексидина 3%. Постельное белье, одеяла и другие тканевые изделия по возможности должны быть подвержены стирке в горячей воде (более 70 градусов Цельсия) желательно с добавлением белизны. Ковры и обивку мебели можно почистить паром с хлоргексидином, добавленным в воду. Необходимо пропылесосить и продезинфицировать вентиляционные отверстия. Не забывайте упаковывать мешки из пылесоса в пакеты и утилизировать как можно быстрее. Поскольку M. canis передается через контакт с пораженными волосами, необходимо продезинфицировать или заменить все предметы ухода, ошейники, игрушки, лежанки и пр.

Контроль эффективности лечения осуществляется осмотром животного и поражений на коже, проведением трихоскопии и посевом на специальные среды. Лечение проводится до получения отрицательного посева, а если заболевание возникло в приюте или питомнике, то до двух отрицательных посевов с интервалом в месяц. Однако довольно часто бывает повторное заражение спорами из среды.

Прогноз зависит от вида дерматофита и условий содержания животного. Будьте терпеливы в процессе лечения, иногда проходит несколько месяцев до полного излечения.

Особенную сложность в лечении  представляют приюты и питомники, поскольку практически невозможно полностью устранить заражение среды.

Коллектив ветеринарной клиники «Дружочек» желает Вам и Вашим питомцам здоровья!

 

Лишай у кошек и котов

Лишай, или дерматофития — такое название получила обширная группа широко распространенных дерматологических заболеваний вирусного или грибкового характера, сопровождающихся появлением мелкой узелковой сыпи, вызывающей зуд.

Лишай — заразная болезнь, которая передается не только другим животным, но и людям. Особенно часто страдают от нее дети. Поэтому не стоит игнорировать проблему. При появлении даже незначительной сыпи покажите домашнего любимца ветеринару.

Качественное лечение по доступной цене вам предложат в зооветеринарном центре «АМИКУС ВЕТ».

Лишай – это общее название группы заболеваний кожи вызванных грибками.

Самые распространённые возбудители это — микроспория ( Microsporum canis), трихофития (Trichophyton tonsurans). Симптомы заболеваний похожи. Трихофитией и микроспорией болеют люди и животные. Заразиться можно при контакте с больным животным , а также через предметы ухода за питомцем.

Симптомы лишая должны быть известны любому заботливому владельцу, поскольку возбудители широко распространены в природе и находятся в земле , старой шерсти , на подстилках или одежде. Животные могут быть носителями грибка, без проявления клинической картины заболевания. Пристального внимания требуют следующие симптомы:

  • Выпадение шерсти в период между линьками.
  • Появление на коже участков без шерсти.
  • Появление зуда и расчёсанных пятен на коже.
  • Медленное обрастание животного после линьки.
  • Перхоть.

Основная причина лишая у животных – снижение иммунитета и нарушение микрофлоры кожных покровов. Важно заметить заболевание как можно раньше, если начать лечение при появлении первых симптомов лишая, с болезнью удастся справиться на много быстрее. Поэтому при проявлении каких либо признаков лишая необходимо обратиться в ветеринарную клинику.

Только после осмотра животного специалистом и лабораторных исследований, можно поставить диагноз и назначить лечение.

Стригущий лишай, дерматофития у кошек

Дерматофития («стригущий лишай») часто отмечается у кошек. Это группа грибковых заболеваний, вызываемых грибками Trichophyton и Microsporum. Возможно заражение человека. Собаки тоже болеют лишаем, но горазде реже, чем кошки.

Грибки распространены повсеместно. Но из-за того, что здоровая кожа имеет множество защитных механизмов, прижиться на ней грибку очень не просто. Как правило, данное заболевание отмечается у котят, у которых еще слабая иммунная система, не способная предотвратить развитие грибка на коже, а также у ослабленных животных. Отмечается повышенная восприимчивость к заболеванию среди длинношерстных кошек, особенно, персидской породы. Животные, имеющие доступ на улицу, подвержены большему риску заражения. Развитию заболевания способствуют повреждения кожи (расчесы, порезы при стрижке).

Простонародное название всех кожных грибковых инфекций, поражающих шерсть животного — «стригущий лишай». Называют их так из-за характерного вида поражений — в процессе развития грибка волос повреждается и обламывается, что придает шерсти выбритый вид. Наиболее часто у кошек отмечается дерматофития, вызываемая грибком Microsporum — микроспория кошек.

Симптомы лишая у кошек

Первоначально на коже появляются округлые очаги облысения. Наиболее часто очаги расположены на голове (морде, ушах) и передних конечностях. Иногда кожа в области очага шелушится, или образуется корочка. Обычно эти облысения не доставляют дискомфорта кошке, зуд не наблюдается. Может возникать всего один небольшой очаг, а может быть множество обширных очагов, поражающих все тело кошки. У людей, контактирующих с больной кошкой, особенно детей, тоже может отмечаться появление на коже очагов.

Диагноз ставится на основании клинических признаков, обследовании лампой Вуда (некоторые популяции грибков светятся под светом этой лампы), трихоскопии (исследовании волос под микроскопом) и посева на лишай (образцы поврежденных волос сеют на питательную среду). Диагноз не всегда удается поставить сразу после осмотра. Нередко в сомнительных случаях окончательный диагноз можно поставить только после проведения посева и обнаружения специфического возбудителя.

Лечение лишая у кошек

Так как болезнь опасна и для человека, то лечение необходимо начать как можно раньше. Для лечения «стригущего лишая» у кошек в нашей ветклинике используют местные и системные противогрибковые препараты. Для местного лечения можно применять растворы, спреи, шампуни. Такая терапия подходит только для случаев с одним очагом поражения и не всегда является успешной, так как грибок может проникнуть вглубь волосяного фолликула, где эти препараты не оказывают на него воздействие. В этом случае, а также в случае множественных очагов, необходимо проводить системную противогрибковую терапию (применять препараты для приема внутрь — таблетки, капсулы). Курс приема противогрибковых препаратов может занять длительный срок (до 1 месяца и более). Противогрибковые препараты нормально переносятся кошками, побочные явления бывают редко.

Для эффективной борьбы с возбудителем также необходимо проводить обработку помещения от спор грибка, которые в большом количестве выделяются вместе с пораженными волосами. Для обработки можно использовать растворы хлора более 5%, кипячение, обработку паром. Хороший противогрибковый эффект оказывает гипохлорит натрия («Белизна»). Необходимо обработать всю квартиру, и наиболее тщательно места излюбленного пребывания животного, подстилку и средства для ухода (расчески, пуходерки). При возможности лучше полностью их заменить на новые.

Лишай у кошки что делать, симптомы, лечение и профилактика в домашних условиях

Многие помнят из детства наставления мамы о том, что нельзя трогать животных на улице, потому что можно подцепить лишай. Мама права: это заболевание (медицинское название — дерматофития) действительно передается от животного к человеку. Что делать, если вы подозреваете лишай у вашей кошки?

Что это за болезнь?

Лишай (дерматофития) — инфекционное заболевание, его вызывают микроскопические грибки родов: Microsporum и Trichophyton. В зависимости от типа возбудителя может развиваться либо микроспория, либо трихофития. Клиническая картина в обоих случаях одинаковая. Важно понимать, что распространяется это заболевание с помощью спор, которые сохраняют жизнеспособность до двух лет. Они передаются при контакте больного животного со здоровым, а также на территории, где обитает больное животное. Заражение может происходить повсеместно.

Наиболее подвержены заболеванию ослабленные животные, котята и пожилые кошки.

Симптомы заражения

Только ветеринарный врач после проведения диагностики может с уверенностью сказать, что животное болеет одной из форм дерматофитии. Для своевременного обращения к врачу необходимо знать, на какие клинические признаки следует обратить внимание.

  • Выпадение волос — образование небольших проплешин размером с 10-копеечную монету, чаще всего в области головы и на передних конечностях, иногда поражается кончик хвоста;
  • Кожа в местах выпадения волос может быть покрыта чешуйками и шелушиться. Как правило, поражение кожи не сопровождается зудом.

Лечение

Диагноз дерматофития не ставится только на основании клинических признаков. Для диагностики используется комбинация нескольких методов: исследование с лампой Вуда, микроскопия волос, собранных с пораженных участков, и культивирование дерматофитов (посев на питательную среду).

При подтвержденном диагнозе лечение дерматофитии у животных состоит из приема внутрь противогрибковых средств, наружной обработки (для уменьшения заражения окружающей среды спорами) и обработки территории для предотвращения повторного заражения. Лечение дерматофитии в питомнике или при скученном содержании кошек в квартире может потребовать больших денежных и временных затрат.

Обработка окружающей среды очень важна как для лечения, так и для профилактики повторного заражения; ветеринарный врач обязательно подробно расскажет, как это сделать, основные же принципы следующие: регулярная чистка ковров и всех мягких поверхностей с помощью пылесоса, влажная уборка с дезинфицирующими средствами, многократная стирка одежды, постельного белья, а также подстилок животного.

Владельцы животных не всегда заражаются дерматофитией от своих питомцев, однако дети и люди с пониженным иммунитетом находятся в зоне повышенного риска. Соблюдение общепринятых правил гигиены хорошо работает в этой ситуации.

Профилактические меры

  • Не допускайте контакта своего питомца с бездомными животными;
  • Если вы подобрали на улице котенка, имеет смысл содержать его изолированно до визита в ветеринарную клинику и соблюдать правила личной гигиены;
  • Регулярно показывайте своего питомца ветеринарному врачу с целью профилактической обработки, обращайтесь в клинику при первых симптомах заболевания;
  • Не пытайтесь ставить диагноз и лечить кошку самостоятельно, особенно по советам друзей и знакомых.

Статья не является призывом к действию!

Для более детальной проработки проблемы рекомендуем обратиться к специалисту.

Спросить ветеринара

23 июня 2017

Обновлена: 6 июля 2018

Статья была полезна?

Спасибо, давайте дружить!

Подписывайтесь на наш Инстаграмм

Подписаться

Спасибо за обратную связь!

Давайте дружить — скачайте приложение Petstory

Лишай у кошек

Дерматофития кошек — лишай в простонародии. Это группа кожных грибковых заболеваний, которая поражает животных и их хозяев.

Опасность для здоровья несут в себе грибки рода Microsporum canis, M. gypseum, Trichophyton mentagrophytes. Поражает заболевание чаще молодых, пожилых или животных с низким иммунным статусом. Возможно самовыздоровление организма без медикаментозного вмешательства. Взрослые животные часто могут являться носителями дерматофитов без явных клинических признаков. Есть мнение об особой восприимчивости персидских кошек к этой группе заболеваний. Заражение дерматофитами происходит при непосредственном контакте кошки с инфицированным носителем или через предметы быта. Инкубационный период в среднем составляет от 7 до 30 дней.

Стригущий лишай у кошек

Так как существуют разные виды лишая, клинические признаки заболевания могут сильно варьировать в зависимости от вида грибка, вызвавшего симптомы и реакции самого организма на возбудителя. Как выглядит лишай у кошек? Чаще всего, дерматофития проявляется алопециями (залысинами), ломким и жирным шерстным покровом, зудом, шелушением и воспалением кожи. Поражение обычно носит округлую форму со здоровыми волосинками в центре.

Как определить, что у кошки лишай?

Диагностировать кошачий лишай можно несколькими способами. Самый простой метод выявления грибков — исследование шерстного покрова под лампой Вуда. Образуется специфическое ярко-зелёное свечение стержня волоса. Необходимо помнить, что применение препаратов местно затрудняет диагностику. Флуоресцирует только часть грибков вида М. Саnis, тогда как остальные виды могут быть вовсе не замечены. Другим методом диагностики является микроскопия волосков. Самым надежным методом диагностики является выращивание проб на питательной среде. Методика заключается в том, что производится забор пробы с места поражения щеточкой и помещается на среду благоприятную для роста дерматофитов. Через несколько недель оценивают положительный или отрицательный результат по наличию или отсутствию роста грибов.

Так как дерматофития носит зооантропонозный характер (поражает животных и человека), не следует пренебрегать лечением данного заболевания.

Чем лечить?

Основная цель: ускорение выздоровления больного и минимизация распространения возбудителя в окружающей среде. Лечение лишая у кошек заключается в купаниях, местных обработках, системном лечении (в основном, лекарство в таблетированной форме). Необходимо тщательно наблюдать за общим состоянием любимца в период приема препаратов, поскольку применение их, зачастую, долгосрочное и обладает гепатотоксичностью. Местные препараты, такие как мазь, должны наноситься с пониманием того, что животное может их слизать, нужно не допустить этого, возможно возникнет необходимость надеть защитный воротник на кошку. Лечение стригущего лишая, зачастую, занимает не меньше 4 недель и продолжается еще некоторое время после выздоровления. Целесообразность применения вакцин, по последним данным, не оправдана. Вакцина не работает. При слабой динамике выздоровления, имеет смысл провести диагностику возможных причин иммунодефицитнного состояния организма животного (хронические вирусные инфекции, эндокринологические заболевания).

Что делать, если у кошки лишай?

Для профилактики распространения инфекции необходима тщательная уборка помещений хлорсодержащими растворами, противогрибковыми средствами, облучение помещений ультрафиолетовыми лампами.

Все вновь приобритенные и подобранные животные в обязательном порядке должны быть обследованы на предмет дерматофитии.

Будьте внимательны к здоровью питомца и при необходимости обращайтесь к ветеринарному врачу-дерматологу.

Мицетома, вызванная Microsporum canis и генерализованная дерматофития у кошки, инфицированной вирусом иммунодефицита кошек (FIV)

Е. Гогер, Г. Бурдвазу

У кошки европейской породы в возрасте 7 лет, на фоне иммуносупрессивного состояния под воздействием FIV, выявлена дерматофитная мицетома.

Дерматофитии — это поверхностные дерматомикозы, возникающие вследствие инокуляции, инфицирования и заражения патогенными эпидермотропными грибами с кератинофильными и кератинолитическими свойствами, относящимися к группе дерматофитов, в основном, к роду микроспории (Microsporum) и трихофитии (Trichophyton). У кошек клинические признаки дерматомикозов характеризуются выраженным полиморфизмом [монетовидная, центробежно развивающаяся алопеция, милиарный (просяной) дерматит, локальная или генерализованная корковая депиляция, региональная или генерализованная кератосеборея, перионихии (воспаления мягких тканей около когтей) и онихии (поражение когтя по причине воспаления когтевого ложа), а также керионы и т.д.] (D.N. Carloti, B. Couprie, 1988).

Иногда дерматофиты способны инокулироваться в дерму, гиподерму или в соединительнотканные фасции. Они могут стать причиной псевдоновообразований и повреждений, которые называют мицетомами (J. Euzeby, 1992, 1944). У кошки дерматофитные мицетомы встречаются редко и, вероятно, только у персидской породы (M. Bourdin et coll., 1975; P.A. Tuttle, 1983; J.A. Yager et coll., 1986; W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986; L. Midleau P.M. Rakich, 1994; M. Corazza, 1998).

Исследование мицетомы, вызванной Microsporum canis у кошки европейской породы, вызвало необходимость описать клиническую картину, а также на конкретном случае получить данные гистоморфологических и терапевтических исследований в ассоциации с хирургическим иссечением и системным назначением антифунгоидного итраконазола.

1. Описание клинического случая

Кошка европейской породы в возрасте 7 лет была обследована по причине обнаружения безболезненного узла, локализующегося на боковой поверхности туловища и развивающегося в течение четырех месяцев. Кошка живет в доме и имеет возможность выходить во внешнюю среду, где она встречается со своими сородичами. Год назад у нее выявляли дерматофитию, вызываемую Microsporum canis, клинически характеризующуюся сквамозной депиляцией на наружной поверхности преддверия ушных раковин и дистальной части передних (грудных) конечностей. Лечение путем системного назначения антифунгоидного препарата кетоконазола (Ketofongol 50 ND, 10 мг/кг/в сутки перорально вместе с кормом), проводимое каждые четыре дня на протяжении шести недель в сочетании с топическим применением антифунгоидного препарата эниоконазола (Imaveral ND), разведенного в 50 раз (0,2% р-р, раз в четыре дня в течение шести недель), обеспечило полное клиническое выздоровление животного. С этого момента никакого контроля в отношении элиминации грибов не проводили.

На день консультации было проведено общее клиническое обследование, при котором не удалось выявить каких-либо специфических изменений. При обследовании кожного покрова не удалось выявить хоть каких-нибудь алопецических нарушений, но при этом отмечали дискретную себорею. На левой стороне боковой поверхности туловища, было обнаружено присутствие только одного узелка в диаметре 4 см, с углублением в центре и недавно проявившимся изъязвлением (фото 1). Выделения из узелка сопровождались наличием желтоватых зерен.

Фото 1. Мицетома, вызванная Microsporum canis.

Предположительный диагноз был ориентирован на паникулит полиэтиотропной природы (бактерии, грибы, опухоли и т.д.). Учитывая локализацию образования на боковой поверхности туловища, было принято решение о проведении обширной хирургической операции. После ушивания иссеченного участка кожного покрова, одну часть биопсийного материала поместили в 10% р-р формальдегида для проведения дальнейшего рутинного гистоморфологического исследования (окраска гемотоксилин-эозином и применение кислой поэтапной реакции Шифа), тогда как другую после растирания в ступке посеяли на среду Сабуро с добавлением хлорамфеникола и актидиона. Помимо этого, животное было подвержено классическому микологическому обследованию. Проведенные исследования с помощью лампы Вуда, а также шерстного покрова и чешуек, взятых с периферийной части узла, не позволили выявить инвазии волосяного покрова, которая была бы возможна с помощью филаментов и спор. И, наконец, культуральный высев для обнаружения грибов осуществляли на среде Сабуро с добавлением хлорамфеникола и актидиона, используя при этом шерсть и десквамированную часть кожного покрова (чешуйки), полученного путем вычесывания с помощью стерильной зубной щетки. При проведении клинического и биохимического анализов крови (мочевина, креатинин, глюкоза, ALAT, PAL, GGT) каких-либо отклонений от нормы установлено не было. Исследование на инфицирование ретровирусами дало негативную реакцию в отношении FeLV и позитивную для FIV. Гистоморфологическое исследование элементов биопсийного материала свидетельствует о наличии в глубоком слое дермы и жировой части подкожной клетчатки, гранулем, центрированных на фунгоидных элементах, окруженных эпителиоидными макрофагами, а также гистиоцитами, небольшим количеством гигантских полинуклеарных клеток, плазмоцитов и нейтрофильных гранулоцитов (фото 2). Ни одного фунгоидного элемента не было выявлено в поверхностной части кератина эпидермального слоя и в волосяных фолликулах кожного покрова. По истечении десяти дней в обеих средах было обнаружено множество колоний мицелярной формы, имеющих картину пуха желто-оранжевого цвета как на поверхности, так и внутри культуральной среды. На третью неделю в расплавленной, утолщенной и омертвевшей стенке макроконид было обнаружено и идентифицировано шесть ячеек, относящихся к дерматофиту Microsporum canis.

Фото 2. Гистоморфологическое исследование: следует отметить наличие фунгоидных гранулем, локализующихся в центре на колониях Microsporum canis (окраска PAS, ×250).

На основании проведенных исследований поставлен окончательный диагноз — дерматофитная мицетома, вызванная Microsporum canis, в ассоциации с инфекцией FIV.

Предшествующее этому хирургическое иссечение патологического очага было дополнено системным назначением антифунгоидного препарата итраконазола. Итраконазол относится к триазолам, который в отличие от эмидазола и кетаконазола, более эффективен и менее токсичен. На первом этапе лечения препарат назначали в дозе 10 мг/кг перорально в форме сиропа с интервалом 24 часа в течение шести недель. Повторный высев на грибы из шерстного покрова и чешуек, собранных с помощью стерильной зубной щетки, был осуществлен к концу шестой недели. За время ожидания результатов высева лечение итраконазолом продолжали в течение двух недель. Результаты культурального роста из волосяного покрова и чешуек оказались негативными. Лечение с помощью итраконазола продолжали в течение двух недель. В целом полный курс лечения итраконазолом составил десять недель. Какого-либо вторичного эффекта на уровне клинического состояния пациента, а также биохимического исследования (изменения ферментативного состава печени) на протяжении всего курса лечения выявлено не было. Очередной культуральный высев грибов, осуществляемый по той же схеме, проводили через 3 месяца с момента прерывания курса лечения итраконазолом. Результаты высева оказались негативными (отсутствие роста грибов).

Фото 3. Сквамозный дерматит в дорсолюмбальной области. Фото 4. Хвост в состоянии кератосебореи.

Через шесть месяцев у кошки, которая была представлена на консультацию, отмечали наличие распространяющейся сквамозной гиперпигментированной алопеции по поверхности грудного, поясничного отделов, позвоночного столба и хвосте (фото 3, 4). Прурит при этом не наблюдали. Исследование кожного соскоба, а также использование для этой цели лампы Вуда, подтвердили отсутствие возбудителя инфекции. Микроскопическое исследование шерстного покрова и чешуек указывает на присутствие распространения по волосяному покрову спор эндоэктотрихий. Высев шерстного покрова и чешуек, взятых с помощью гемостатического пинцета, с периферии пораженного участка кожного покрова на среду Сабуро с добавлением хлорамфеникола и актидиона, через три недели позволило идентифицировать микроконидии, типичные для Microsporum canis. Гистоморфологическое исследование пораженных участков биопсийного материала указывает на ярко выраженное уплотнение филаментов мицелий, локализующихся в гипер- и ортокератозном эпидермальном слое и фолликулах с лихеноидной формой дерматита, представленного с внутренней поверхности в основном лимфоцитами и плазмоцитами, (фото 5) и повреждениями в форме фурункулезных дерматофитных нарушений (фото 6).

Фото 5. Гистоморфологическое исследование: следует отметить персистенцию очень большого количества филаментов мицелия, инвазирующих кератин, локализующийся в эпидермальном слое кожного покрова (окраска PAS, ×250). Фото 6. Гистоморфологическое исследование (керион): следует обратить внимание на персистенцию фурункула с повреждением базальной мембраны волосяного фолликула, центрированного на волоске, поврежденного стригущим лишаем (окраска PAS, ×100).

Учитывая выраженное проявление дерматофитии и прогрессирующее ухудшение общего состояния пациента, вне всякого сомнения, ассоциирующееся с инфицированием FIV, владельцы попросили провести эвтаназию животного.

2. Обсуждение

Термин «мицетома» означает гранулематозное или пиогранулематозное псевдоонкологическое образование в дермальном или гиподермальном слое кожного покрова, а также в соединительной фасции. Это образование содержит нагноения в гранулах, которые формируются бактериями или грибами, что подтверждается их идентификацией при выделении в виде чистых культур, выращенных на специальной среде. По данным J. Euzeby, (1992, 1944), эти мицетомы встречаются в единственном количестве и возникают, в основном, при локальной инокуляции грибов или бактерий по причине проникающего ранения, укуса и т.д. Фунгоидные мицетомы носят исключительный характер и возникают при инокуляции дерматофитов, которые чаще относятся к роду Microsporum canis или грибам разных родов: Rhizomucor, Mortierella, Fusarium, Paecilomyces, Alternaria, Bipoloris, Cladosporium и т.д. (C.S. Foil, 1998). Что касается кошек, то все случаи дермофитных мицетом были выявлены у персидской породы (M. Bourdin et coll., 1975; P.A. Tuttle, 1983; J.A. Yager et coll., 1986; W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986; L. Midleau P.M. Rakich, 1994; M. Corazza, 1998). В собственных клинических исследованиях мы впервые описываем эти заболевания у другой породы. У персидской породы наиболее высокая частота асимптоматического течения заболевания, которое, вероятно, относится к мицетомам, вызываемым Microsporum canis в результате ранений. Наиболее часто мицетома ассоциируется с сопутствующей или более ранней дерматофитией (P.A. Tuttle, 1983; J.A. Yager et coll., 1986; W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986; L. Midleau P.M. Rakich, 1994; M. Corazza, 1998), как это имело место и в нашем случае. Развитие дерматофитий в кератиновом слое, в дерме и гиподерме, а также в соединительных фасциях происходит при определенных условиях (увеличение патогенности некоторых штаммов Microsporum canis, снижение резистентности хозяина, вследствие иммуносупрессии, вызванной ретровирусами) (Shaw S.E. et coll. 1990). В нашем случае сопутствующее инфицирование FIV, что очень важно, облегчило проявление мицетомы и инфестации дерматофитии на теле животного в форме мицелярных филаментов.

На данный момент нет исследований, которые доказывают наличие оппортунистических дерматозов, связанных с FIV (K. Hartman, W. Kraft,

1998). В одном из клинических случаев у человека сообщается об ассоциации между ретровирусами и оппортунистическими дерматозами. С другой стороны, в некоторых исследованиях выявлена ассоциация между некоторыми клиническими манифестациями и инфекцией, вызываемой этими ретровирусами (Shaw S.E. et coll. 1990). Появление оппортунистических дерматозов находится во взаимосвязи с более ранним проявлением иммунодепрессии, возникающей на клеточном уровне. В целом прогноз лечения кошки, инфицированной FIV, до появления у нее признаков, свидетельствующих о полном формировании иммунодефицита на уровне целлюлярного аппарата, не хуже чем у индемной (indemne) особи (K. Hartman, W. Kraft, 1998). В настоящее время имеется лишь незначительное число публикаций в отношении развития фунгоидной флоры кожного покрова у кошек, инфицированных ретровирусами (P. Sierra, 1997). Тем не менее, следует обратить внимание на то, что носительство грибов (роды и виды) наиболее характерно для кошек, инфицированных ретровирусами (F. Manciani et coll., 1992). У этих особей носительство Microsporum canis сильно варьируется и, согласно анкетированию, оно колеблется в пределах 10–75%. В основном эти вариации объясняются слишком разными формами проявления у тестированных популяций кошек (P. Sierra, 1997; F. Manciani et coll., 1992). Ни в одном из исследований также не говорится о том, что поверхностные и глубокие микозы чаще проявляются у кошек, инфицированных ретровирусами. Кроме того, мы можем сказать, что клинически они протекают намного тяжелее и содержат гораздо больше фунгоидных элементов, которые требуют более длительных курсов лечения и часто завершаются не полностью, даже при наличии поверхностных микозов, как это имело место и в нашем случае.

Лечение дерматофитных мицетом часто завершается неудачей (M. Bourdin et coll., 1975; P.A. Tuttle, 1983; W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986). Их хирургическое иссечение является недостаточным, поэтому необходимо проводить дополнительную системную антифунгоидную терапию. Что касается гризеофульвина, то результаты терапевтического вмешательства при его назначении неодинаковы (M. Corazza, 1998), и, с другой стороны, такой способ лечения противопоказан кошкам, инфицированным FIV, в связи с возможной индукцией аплазии костного мозга (G.H. Shelton et coll., 1990). Кетоконазол, который не имеет разрешения его реализации на рынке для кошек, при лечении дерматофитных мицетом также дает противоречивые результаты (W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986). С другой стороны, его назначение может давать осложнение на печень (рвоты, диарея, анорексия, иктеричность и повышение уровня ферментов печени) у представителей данного вида (L. Medleu, S.A. Chalmers, 1992; B.R. Mignon, B.J. Losson, 1997). Наконец, итраконазол является азолированным, фунгицидным веществом, к которому проявляется большой интерес в лечении дерматофитий (L. Medleau, P.M. Rakich, 1994; K.A. Moriello, D.J. De Boer, 1995). Он, как все дериваты азолов, действует на цитоплазму через P450 митохондрий. В отличие от других имидазолов, он обладает более специфическим действием на фунгоидные клетки и менее выраженным аффинитетом (сродством) к клеткам млекопитающих. Эти фармакокинетические свойства препарата характеризуются более длительным периодом полураспада в плазме (17–19 часов), наибольшим объемом распределения и концентрации в тканях, которая в 10–20 раз превышает таковую в сыворотке, что является основной причиной его применения для лечения глубоких микозов (H. Degreef, 1993; W. Meinhof, 1993; M.C. Heit, J.E. Riviere, 1995). В случае дерматофитий и дерматофитных мицетом, его назначение выверено наиболее точно и составляет 10 мг/кг в сутки в один прием перорально (W.H. Miller, M.H. Goldchmidt, 1986; L. Medleu, S.A. Chalmers, 1992; K.A. Moriello, D.J. De Boer, 1995), хотя его применение в более низких дозах (3 мг/кг перорально один раз в сутки), вероятно, также имеет благоприятный эффект терапевтического воздействия (F. Manciani, F. Pedonese, 1998). Вероятно толерантность к итраконазолу у кошек более выражена в отличие от кеназола. Если учесть его гепатотоксичность у собаки, то биохимическое исследование печени необходимо проводить регулярно. Эта редко возникающая гепатотоксичность, вероятно, объясняет его назначение в дозе 20 мг/кг в сутки в один прием (L. Medleau, P.M. Rakich, 1994). Наконец, следует иметь в виду, что использование итраконазола также противопоказано для беременных самок.

СВМ 2/2006

Оценить материал

Нравится

Нравится Поздравляю Сочувствую Возмутительно Смешно Задумался Нет слов

1

Дерматофитозы у собак и кошек

Дерматофиты представляют собой патогенные грибки, вызывающие кожные заболевания у мелких животных и людей; они могут представлять собой серьезную проблему для животных из приютов и домашних животных, которым разрешено длительное пребывание на открытом воздухе. Наиболее распространенные дерматофитные инфекции, диагностируемые у мелких животных, вызываются Microsporum canis , Microsporum gypseum и Trichophyton mentagrophytes , а наиболее распространенными источниками инфекции являются кошки ( M canis ), инфицированная почва ( M 0 gyps04 90). и грызуны ( T mentagrophytes ). 1

Хотя дерматофиты передаются при контакте с артроспорами, контакт с артроспорами не всегда приводит к установлению инфекции. Устойчивость к инфекции связана с сильным клеточно-опосредованным ответом. 2 Инфекция чаще развивается у очень молодых, престарелых или подвергшихся стрессу животных. 3 У кошек из приютов инфекции дерматофитами, отличными от M. canis , встречаются редко и, по-видимому, не представляют сложности для лечения; большинство кошек достигают микологическое излечение в течение 3 недель лечения. 4

Клинические признаки и диагнозы

Дерматофитозы имеют разнообразные клинические проявления. Поскольку дерматофиты являются кератинофилами, их мишенями являются волосы и ногти.

Фолликулит

Когда дерматофиты поражают волосы, они приводят к фолликулиту ( РИСУНОК 1 ). Инфекции проявляются в виде папул и пустул (, РИСУНОК 2, ), которые быстро разрываются, оставляя эпидермальные воротнички, круглые участки алопеции (, РИСУНОК 3, ) и корочки.Дифференциальный диагноз фолликулита включает стафилококковую инфекцию ( РИСУНОК 4 ) и, особенно у собак, демодекоз ( РИСУНОК 5 ). Таким образом, при обследовании собаки с признаками фолликулита проведите цитологическое исследование на наличие внутриклеточных бактерий и глубокие соскобы кожи, чтобы исключить демодекоз.

По опыту автора, бактериальный фолликулит обычно встречается у собак чаще, чем дерматофитная инфекция; однако не делайте предположений и не пропускайте этапы диагностики.Дерматофития может представлять серьезную проблему для собак определенных пород, таких как йоркширские терьеры. Очень важно пройтись по списку дифференциальных диагнозов и последовательно логично обработать каждый случай. Другие причины пустулезной болезни (например, листовидная пузырчатка), которые не связаны с фолликулами, также следует учитывать при обследовании пациентов с выпадением волос и образованием корочек. Хорошим начальным подходом является исключение причин фолликулита, сначала путем цитологического исследования, глубоких соскобов кожи и посева грибков.

Узловые поражения

Иногда дерматофиты случайно инокулируются в дерму (например, во время травмы), что приводит к тяжелой воспалительной реакции и развитию узелкового поражения, называемого керионом. 5 Это узловатое поражение обычно встречается на переносице у собак, которые любят копать. Даже после гибели дерматофитов тяжелая воспалительная реакция может сохраняться. Другим проявлением нодулярной болезни, вызываемой дерматофитами, является дерматофитная мицетома, называемая также псевдомицетомой.Эта необычная кожная/подкожная инфекция в основном встречается у персидских кошек и проявляется в виде узелков с дренажными путями, как правило, на спине. Эти кошки обычно представлены, потому что они не реагируют на терапию антибиотиками.

Для пациентов с узловыми поражениями важно определить, являются ли они результатом инфекционных агентов. Часто требуется биопсия для гистопатологии и посева, но также следует выполнить цитологическое исследование, поскольку мазки-отпечатки могут быть диагностическими. 5

Поражения ногтей

Дерматофиты могут поражать подушечки лап ( РИСУНОК 6 ) и ногти ( РИСУНОК 7 И 8 ).Пораженные дерматофитами ногти становятся ломкими и деформированными, особенно у собак с инфекцией M gypseum . 6

Дифференциальный диагноз деформированных и ломких ногтей может включать системную люпоидную ониходистрофию или генетически унаследованные дистрофии, не являющиеся иммуноопосредованными. При рассмотрении этих случаев, прежде чем рассматривать биопсию или другие инвазивные диагностические тесты, возьмите образцы пораженных ногтей (например, обрезки ногтей) и отправьте их на грибковую культуру.

Методы диагностики

В недавно опубликованном клиническом консенсусном документе по дерматофитии у мелких животных сделан вывод после обзора современной литературы о том, что ни один диагностический тест не может быть признан золотым стандартом для диагностики дерматофитии. 1 Авторы заявляют, что диагноз ставится с использованием дополнительных методов для определения активной инфекции, таких как прямое исследование артроспор на инфицированных волосах и грибковая культура волос, собранных стерильной зубной щеткой.

Лампа Вуда

Использование лампы Вуда по-прежнему рекомендуется в качестве инструмента скрининга, и в настоящее время признано, что большинство инфекций, вызванных M canis , флуоресцируют как яблочно-зеленый цвет под лампой Вуда. В зависимости от исследования положительный результат колеблется от 91% до 100%; более высокие проценты были обнаружены в исследованиях экспериментально индуцированной инфекции. 1 Способность к флуоресценции развивается после первой недели заражения и может сохраняться на кончиках волосков после исчезновения инфекции. 1 Авторы консенсусного документа пришли к выводу, что лампа Вуда является лучшим инструментом для первоначального скрининга, чем для контроля за успехом лечения. 1 Клиницисты должны знать, как правильно пользоваться лампой Вуда. Осмотр следует начинать с головы пациента, медленно продвигаясь назад, удерживая лампу близко к коже (от 2 до 4 см), отличая яблочно-зеленую флуоресценцию волос при дерматофитии от ложной синей флуоресценции, которую можно увидеть при скейлинге и некоторых средствах для местного применения. . 1

Культура грибов

В течение десятилетий золотым стандартом диагностики дерматофитов была культура грибов. Однако реальность такова, что этот подход просто указывает на наличие или отсутствие спор на волосках. Успех этого подхода частично зависит от метода отбора проб и области, выбранной для выращивания. Методом, широко описанным в литературе, является подход с использованием зубной щетки, который может обнаруживать бессимптомных животных-носителей. В 2017 году Ди Маттиа и соавт.сообщили о важности правильной инокуляции образцов на среду для культивирования грибов. Прижатие зубной щетки к пластине является оптимальным способом максимизировать рост M canis и свести к минимуму рост загрязнений. 7

Прямой осмотр

Выщипывание волос с краев существующего поражения считается полезным для конкретного решения вопроса о том, может ли поражение быть вызвано дерматофитом, хотя выщипывание волос все же может привести к отрицательным результатам. 1 Предметные стекла с 10–20 выщипанными волосками в минеральном масле можно исследовать под микроскопом на наличие артроспор.

Полимеразная цепная реакция

В последние годы внимание привлекло использование полимеразной цепной реакции (ПЦР) для диагностики дерматофитии, и результаты исследований различаются в зависимости от используемой ПЦР. В 2018 году Мориелло и соавт. обнаружили, что количественная ПЦР (кПЦР) образцов культуры грибка зубной щетки поражений у кошек из приюта была надежным тестом для подтверждения заболевания. 8 Результаты количественной ПЦР и культуры грибов совпали в 94% случаев. КПЦР также правильно идентифицировала 2 кошек как неинфицированных. Микологическое излечение было правильно определено для 65,2% кошек с помощью анализа видов Microsporum qPCR и 84,8% с помощью анализа M canis .

Кафарчия и др. сообщили о высокой точности одноступенчатой ​​ПЦР для собак (площадь под кривой [AUC]>90), но лишь умеренной точности для кошек (AUC = 78,6). 9 В том же исследовании вложенная ПЦР была точной (AUC = 93.6) для образцов от кошек и достигнуты более высокие специфичность (94,1% и 94,4%) и чувствительность (100% и 94,9%) для образцов от собак и кошек соответственно. В другом исследовании, в котором сравнивалась эффективность вложенной ПЦР с прямой микроскопией и посевом, было обнаружено, что степень согласия выше для вложенной ПЦР и прямой микроскопии (94,4%), чем для культуры (83,3%). 10 Подобно грибковым культурам, положительный ПЦР не подтверждает активную инфекцию, и результаты необходимо интерпретировать в контексте клинических признаков.В недавнем исследовании также сообщалось, что ПЦР менее чувствительна, чем сообщалось ранее, но более специфична, что увеличивает риск ложноотрицательных результатов. 11

Лечение

Успешное лечение дерматофитоза у собак и кошек требует сочетания местного лечения, системного лечения и дезинфекции окружающей среды.

Местное лечение

Поскольку дерматофития передается при контакте с артроспорами, местная терапия является важным компонентом лечения.Местное лечение помогает ускорить устранение инфекции и уменьшить выделение артроспор в окружающую среду.

Подрезка

На протяжении десятилетий стрижка была необходимой частью лечения дерматофитии; однако клипирование в настоящее время пересматривается, потому что клипирование всего тела вызывает стресс, а общие микротравмы кожи могут усугубить инфекцию. Таким образом, вопрос об обрезке следует решать в каждом конкретном случае; стрижка не требуется для короткошерстных животных. 1

Дипы, шампуни и ополаскиватели

В Соединенных Штатах по-прежнему рекомендуются известково-серные пропитки. Несколько исследований задокументировали эффективность известково-серных растворов, и применение два раза в неделю более эффективно, чем один раз в неделю. 1,12-14 Дип имеет остаточное действие на шерсть, в то время как действие шампуней короче. 13 По опыту автора, распространенными побочными эффектами серной извести являются сухость и пожелтение. Хотя более ранние исследования сообщали о потенциальном риске возникновения язв во рту у кошек, которые облизывают свою шерсть, пока она еще мокрая, новые исследования не подтвердили эти выводы, что повышает вероятность того, что в более ранних исследованиях использовались более концентрированные растворы. 1 Большинство современных составов известковой серы для ветеринарного применения представляют собой 97,8% насыщенной известковой серы, которая применяется при разбавлении 8 унций/галлон воды.

Когда клиенты возражают против запаха серы, другие варианты, доступные в Соединенных Штатах, включают шампуни и ополаскиватели. Среди шампуней ни хлоргексидин, ни миконазол сами по себе не считаются эффективным средством. Наиболее эффективным местным лечением является комбинация миконазола и хлоргексидина, используемая два раза в неделю. 15,16 Хотя клиницисты обычно считают, что хлоргексидин обладает противогрибковыми свойствами, эффективность хлоргексидина при дерматофитии оказалась низкой. 17

Местное применение Энилконазол также эффективен для лечения дерматофитии у мелких животных 18 , но в настоящее время недоступен в США. В странах, где доступен ополаскиватель с энилконазолом, он считается очень эффективным местным средством против дерматофитии. 19 Хотя энилконазол обычно хорошо переносится, сообщалось, что он вызывает гиперсаливацию, мышечную слабость и незначительное повышение концентрации аланинаминотрансферазы (АЛТ) в сыворотке персидских кошек. 16

Эффективность шампуней, содержащих кетоконазол, для животных не оценивалась в исследованиях in vivo. Исследования in vitro подтверждают эффективность кетоконазола, но клинических испытаний шампуня с кетоконазолом при дерматофитии у мелких животных не публиковалось. 19,20

Точно так же нет исследований in vivo, подтверждающих использование местного климбазола при дерматофитозе у мелких животных. Исследования in vitro показали хорошую остаточную активность 0,5% климбазола с хлоргексидином. 19

Опубликовано только 1 исследование тербинафина для местного применения , в котором сообщается о хорошем ответе. 20

Системное лечение

Идеальным выбором для системной терапии являются кератинофильные и липофильные препараты, которые накапливаются в коже и кератине.В настоящее время наиболее эффективным системным лечением как для собак, так и для кошек является пероральный прием итраконазола или перорального тербинафина. 1

Итраконазол имеет длительный период полураспада у кошек 21 и большую склонность к накоплению в шерсти и коже. Это свойство позволяет использовать пульс-терапию, что снижает стоимость терапии; ежедневное введение в течение 1 недели, затем 1 неделя приема и 1 неделя перерыва показали клинический успех. 22 Другие начали пульс-режим только после ежедневного приема препарата в течение 4 недель. 23 Наиболее часто используемая доза итраконазола для собак и кошек составляет 5 мг/кг один раз в день. Поскольку итраконазол влияет на цитохром P450, важно учитывать лекарственные взаимодействия и снижать дозы других лекарств, если их метаболизм затрагивается этим взаимодействием (например, циклоспорина).

Следует избегать составных форм итраконазола; несколько исследований показали, что комбинированные составы имели субтерапевтическую ценность у леченных животных. 24,25 Непатентованный итраконазол кажется более эффективным, хотя терапевтический мониторинг полезен, поскольку концентрация может сильно варьироваться. 23 Если отмечена неэффективность лечения, переключитесь на продукт, разработанный для людей, Sporanox (Janssen Pharmaceuticals, janssen.com). Также обратите внимание, что при использовании в более высоких дозах итраконазол, как сообщается, вызывает васкулит у собак. 26 Клиницистам следует учитывать возможность этого побочного эффекта при использовании этого препарата, хотя высокие дозы обычно назначаются при системном микозе и не рекомендуются при дерматофитии. Жидкая форма (Итрафунгол; Эланко, эланко.com) доступен для использования у кошек. Сообщаемые побочные эффекты итраконазола включают повышение уровня ферментов печени и анорексию у собак, а также снижение потребления пищи, депрессию и повышение концентрации АЛТ в сыворотке у кошек. 1

Тербинафин очень кератинофилен и накапливается в волосах, 27 позволяет проводить пульс-терапию, что снижает стоимость и побочные эффекты. Тербинафин обладает отличной активностью против дерматофитов, и одно исследование показало, что он эффективен и может представлять собой подходящую и более дешевую альтернативу для кошек из приютов. 14 Обычно используемый диапазон доз тербинафина составляет от 20 мг/кг 14 до 40 мг/кг; 28 эффективность увеличивается при более высоких дозах. Хотя тербинафин не оказывает такого же влияния на цитохром Р450, как азолы, его метаболизм в значительной степени происходит в печени; при длительном лечении может потребоваться мониторинг показателей печени.

Кетоконазол эффективен против дерматофитов, хотя и не так хорош для лечения, как итраконазол или тербинафин.Кетоконазол применялся у кошек; 29 однако, поскольку он обычно плохо переносится и часто вызывает тошноту и анорексию, лучше зарезервировать это лекарство для собак. Кетоконазол обычно назначают собакам в дозе 5 мг/кг перорально каждые 12 часов, и лучше всего принимать его с пищей, чтобы свести к минимуму побочные эффекты и увеличить абсорбцию.

Флуконазол имеет низкую активность против дерматофитов in vitro 30 и больше не рекомендуется для лечения дерматофитии.Флуконазол также растворим в воде и не обладает такой же способностью, как итраконазол и кетоконазол, накапливаться в коже и кератине.

Гризеофульвин исторически использовался для лечения дерматофитии, но теперь доступны более безопасные и эффективные варианты. Таким образом, гризеофульвин редко выбирается в качестве лечения.

Луфенурон ранее рассматривался как возможное лечение, но исследования не показали его эффективности. 31,32 Таким образом, луфенурон не следует рассматривать как вариант лечения.

Вакцины не предотвращают развитие дерматофитии 33 и поэтому не должны использоваться для этой цели.

Обеззараживание окружающей среды

Обеззараживание окружающей среды является основной частью лечения дерматофитии. Это также сводит к минимуму ложноположительные результаты посева грибков. Несмотря на то, что разделение животных с целью сведения к минимуму заражения 34 пропагандировалось на протяжении десятилетий, изоляция должна проводиться с осторожностью, поскольку она может быть очень стрессовой, особенно для молодых животных. 1 Таким образом, продолжительность изоляции должна быть сведена к минимуму до уровня, необходимого для обеззараживания окружающей среды. Потребность в длительной изоляции может быть снижена за счет еженедельной уборки и использования местной терапии.

Исследования показали, что еженедельная уборка очень эффективна для удаления инфекционных артроспор. 35,36 Наиболее важной частью процесса обеззараживания является фактическая тщательная очистка, которая включает удаление мусора и волос. Очистка может быть выполнена безрецептурными бытовыми моющими средствами. 37 Твердые поверхности можно дезинфицировать бытовым отбеливателем с концентрацией 1:100 или ускоренной перекисью водорода. 37,38 Машинная стирка мягких тканей должна выполняться с использованием самого длинного цикла, чтобы максимально удалить споры.

Мониторинг успеха лечения

Клиническое излечение не всегда означает микологическое излечение. Таким образом, отрастание волос и клинический вид пациента могут быть недостаточными критериями для принятия решения о продолжительности лечения. В настоящее время рекомендуется, чтобы контроль за терапией и установление полного излечения пациента основывались на сочетании разрешения клинических признаков и отрицательной грибковой культуры. 1 Степень заражения можно контролировать путем еженедельного посева культур. 1

Мертвые грибковые организмы все еще можно обнаружить с помощью ПЦР. Таким образом, положительный результат ПЦР вместе с исчезновением признаков может указывать на то, что у пациента все еще есть споры на шерсти, а не на реальную инфекцию. Пациенты могут, например, подхватить споры из зараженной среды, несмотря на то, что у них выработался иммунитет и они больше не инфицированы активно. Эти животные могут представлять собой источник инфекции для окружающих их людей, и может потребоваться дальнейшее обеззараживание окружающей среды.Культуры грибов легко доступны на практике и могут помочь в мониторинге лечения. В случае сомнений культуру грибов можно повторить, чтобы убедиться, что результаты действительно отрицательные.

Длинношерстные кошки имеют склонность к субклинической дерматофитии 39 и поэтому являются потенциальными переносчиками. Имея дело со вспышкой дерматофитии в доме с несколькими кошками, каждую кошку следует культивировать, чтобы определить, какие из них действительно отрицательные, а какие клинически нормальны, но несут на своей шерсти артроспоры и потенциально могут быть источником инфекции для других. 40

Резюме

Дерматофитоз — зоонозное, но излечимое заболевание. При обследовании пациентов с фолликулитом пошаговый логический подход имеет решающее значение для правильной диагностики. Диагноз может быть поставлен на основании комбинации клинических признаков и положительных результатов грибковой культуры. При отсутствии клинических признаков положительные результаты ПЦР или посева могут просто указывать на наличие артроспор на шерсти без активной инфекции. Поскольку дерматофиты не являются частью обычной флоры, необходимо определить источник артроспор.Обследование с помощью лампы Вуда по-прежнему рекомендуется для быстрого скрининга инфекции M canis . Большинству пораженных пациентов требуется сочетание местной и системной терапии. Наиболее эффективными пероральными препаратами являются итраконазол и тербинафин, которые можно сочетать с местными растворами извести и серы два раза в неделю и/или шампунями, содержащими миконазол и хлоргексидин. Установление полного излечения пациента должно поддерживаться сочетанием разрешения клинических признаков и отрицательного результата посева.

Ссылки

1. Мориелло К.А., Койнер К., Патерсон С., Миньон Б. Диагностика и лечение дерматофитоза у собак и кошек: Клинические согласованные рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии. Вет Дерматол . 2017;28(3):266–e68.

2. ДеБоер Д.Дж., Мориелло К.А. Гуморальный и клеточный иммунный ответ на Microsporum canis при природном дерматофитозе кошек.
J Med Vet Mycol . 1993;31(2):121–132.

3. ДеТар Л.Г., Дубровский В., Скарлетт Дж.М. Описательная эпидемиология и тестовые характеристики кошек с диагнозом дерматофитии Microsporum canis в приюте для животных на северо-западе США. J Feline Med Surg . 2019;21(12):1198–1205.

4. Moriello KA, Stuntebeck R, Mullen L. Trichophyton видов и Microsporum gypseum инфекция и носительство фомита у кошек из трех приютов для животных: серия ретроспективных случаев. J Feline Med Surg .2020;22(4):391–394.

5. Cornegliani L, Persico P, Colombo S. Узловатая дерматофития собак (керион): 23 случая. Вет Дерматол . 2009;20(3):185–190.

6. Моретти А., Агнетти Ф., Манчианти Ф. и соавт. Дерматофитии животных: эпидемиологические, клинические и зоонозные аспекты. G Ital Dermatol Venereol. 2013; 148:563–572.

7 Ди Маттиа Д., Фондати А., Монако М. и др. Сравнение двух методов инокуляции культуры Microsporum canis с использованием техники отбора проб зубной щеткой. Вет Дерматол . 2019;30(1):60–e17.

8. Мориелло К.А., Лойтенеггер СМ. Использование коммерческого анализа количественной ПЦР у 52 кошек из приютов с высоким риском для выявления дерматофитии и микологического лечения. Вет Дерматол. 2018;29(1):66–e26.

9. Cafarchia C, Gasser RB, Figueredo LA, et al. Усовершенствованный метод молекулярной диагностики дерматофитии собак и кошек. Мед Микол. 2013;51(2):136–143.

10. Пири Ф., Махмудабади А.З., Ронах А. и др.Оценка пандерматофитной гнездовой ПЦР по сравнению с обычными методами прямого обнаружения и идентификации возбудителей дерматофитии у животных. Микозы. 2018;61(11):837–844.

11. Фрост К., Шик А., Маунт Б. Ретроспективный анализ соответствия внутренней культуры дерматофитов и коммерческой количественной ПЦР в 16 специализированных дерматологических клиниках США, 2018–2019 гг. Резюме представлено на виртуальном Североамериканском форуме ветеринарной дерматологии; 2021 21–24 апреля.

12. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др. Лечение приютских кошек пероральным приемом тербинафина и одновременным полосканием известково-серным раствором. Вет Дерматол . 2013;24(6):618–620.

13. Ньюбери С., Мориелло К., Вербрюгге М., Томас С. Использование серной извести и итраконазола для лечения кошек из приюта, естественно зараженных Microsporum canis , в дополнительном учреждении: испытание в открытом поле. Вет Дерматол . 2007;18(5):324–331.

14. Мориелло К., Койнер К., Триммер А. и др.Лечение приютских кошек пероральным приемом тербинафина и одновременным полосканием известково-серным раствором. Вет Дерматол. 2013;24(6):618–620.

15. Мориелло К.А. In vitro эффективность шампуней, содержащих миконазол, кетоконазол, климбазол или ускоренную перекись водорода, против видов Microsporum canis и Trichophyton . J Feline Med Surg . 2017;19(4):370–374.

16. Мориелло К.А. Немедленная и остаточная противогрибковая активность соединений, используемых для лечения всего тела и адъювантной местной терапии против Microsporum canis : исследование in vitro. Вет Дерматол. 2020;31(4):272–e64.

17. DeBoer DJ, Moriello KA. Неспособность двух местных препаратов повлиять на течение экспериментально индуцированной дерматофитии у кошек. ЯВМА . 1995;207(1):52–57.

18. Хнилица К.А., Медло Л. Оценка местного применения энилконазола для лечения дерматофитии в персидском питомнике. Вет Дерматол . 2002;13(1):23–28.

19. Мориелло К.А. Лечение дерматофитии у собак и кошек: обзор опубликованных исследований. Вет Дерматол . 2004;15(2):99–107.

20. Hyo-Seung N, Tae-Young K, Suk-Hee H, Changbaig H. Оценка терапевтической эффективности лечебного шампуня, содержащего тербинафина гидрохлорид и хлоргексидин, у собак с дерматофитией, осложненной бактериальной инфекцией. Дж Биомед Рез . 2013;14(3):154–159.

21. Liang C, Shan Q, Zhong J, et al. Фармакокинетика и биодоступность перорального раствора итраконазола у кошек.
J Feline Med Surg .2016;18(4):310–314.

22. Puls C, Johnson A, Young K, et al. Эффективность перорального раствора итраконазола с чередующейся недельной пульс-терапией для лечения кошек с экспериментальной инфекцией Microsporum canis . J Feline Med Surg . 2018;20(10):869–874.

23. Colombo S, Cornegliani L, Vercelli A. Эффективность итраконазола в качестве комбинированной непрерывной/пульс-терапии при дерматофитии кошек: предварительные результаты в девяти случаях. Вет Дерматол. 2001;12(6):347–350.

24. Mawby DI, Whittemore JC, Fowler LE, Papich MG. Сравнение характеристик абсорбции пероральных эталонных препаратов и составов итраконазола у здоровых кошек. ЯВМА. 2018;252(2):195–200.

25. Реншлер Дж., Альберс А., Синклер-Маклинг Х., Уит Л.Дж. Сравнение компаундированного, генерического и инновационного итраконазола у собак и кошек. ДЖААХА. 2018;54(4):195–200.

26. Николс П.Р., Моррис Д.О., Бил К.М. Ретроспективное исследование кожного васкулита у собак и кошек. Вет Дерматол . 2001;12(5):255–264.

27. Foust AL, Marsella R, Akucewich LH, et al. Оценка персистенции тербинафина в шерсти здоровых кошек после 14 дней ежедневной терапии. Вет Дерматол . 2007;18(4):246–251.

28. Котник Т., Козух Эрзен Н., Кузнер Дж., Дробник-Косорок М. Лечение гидрохлоридом тербинафина Microsporum canis экспериментально индуцированного стригущего лишая у кошек. Вет микробиол. 2001;83(2):161–168.

29.Медло Л., Чалмерс С.А. Кетоконазол для лечения дерматофитии у кошек. ЯВМА . 1992; 200(1):77–8.

30. Бегум Дж., Кумар Р. Распространенность дерматофитоза у животных и тестирование чувствительности к противогрибковым препаратам изолированных видов Trichophyton и Microsporum . Trop Anim Health Prod . 2020;53(1):3.

31. ДеБоер Д.Дж., Мориелло К.А., Блюм Дж.Л., Фольк Л.М. Влияние лечения люфенуроном у кошек на возникновение и течение инфекции Microsporum canis после контакта с инфицированными кошками. ЯВМА. 2003;222(9):1216–1220.

32. Moriello KA, Deboer DJ, Schenker R, et al. Эффективность предварительной обработки луфенуроном для предотвращения инфекции Microsporum canis в модели прямого местного заражения кошек. Вет Дерматол. 2004;15(6):357–362.

33. DeBoer DJ, Moriello KA, Blum JL, et al. Безопасность и иммунологические эффекты после введения инактивированной и комбинированной живой инактивированной вакцины против дерматофитии у кошек. Am J Vet Res. 2002;63(11):1532–1537.

34. Ньюбери С., Мориелло К., Койнер К. и соавт. Ведение эндемической дерматофитии Microsporum canis в приюте с открытым приемом: полевое исследование. J Feline Med Surg. 2015;17(4):342–347.

35. Мориелло К.А., Кундер Д., Хондзо Х. Эффективность восьми коммерческих дезинфицирующих средств против Microsporum canis и Trichophyton spp. инфекционные споры на экспериментально зараженной текстильной поверхности .Вет Дерматол . 2013;24(6):621–623, e151–152.

36. Мориелло К.А. Механическая мойка мисок для корма для домашних животных эффективна для обеззараживания Microsporum canis . Вет Дерматол . 2019;30(5):428–e130.

37. Мориелло К.А. Дезактивация 70 домов приемных семей, подвергшихся воздействию кошек, инфицированных Microsporum canis : ретроспективное исследование. Вет Дерматол. 2019;30(2):178–e55.

38. Мориелло К.А. Дезинфицирующие средства для питомника для Microsporum canis и Trichophyton sp. Вет Мед Инт .
2015; 2015: 853–937.

39. Sattasathuchana P, Bumrungpun C, Thengchaisri N. Сравнение субклинической инфекции дерматофитов у короткошерстных и длинношерстных кошек. Ветеринарный мир . 2020;13(12):2798–2805.

40. Мориелло К. Кошачий дерматофитоз: аспекты, относящиеся к лечению заболевания у одной и нескольких кошек. J Feline Med Surg . 2014;16(5):419–431.

Обзор согласованных рекомендаций по дерматофитии • MSPCA-Angell

Клаус Лофт, DVM
ангел.org/dermatology
[email protected]
617-524-5733

 

Диагностика и лечение дерматофитии у кошек и собак часто может быть сложной задачей как для врачей, так и для владельцев домашних животных.

Обзорные статьи — ценный способ быть в курсе последних событий по темам, имеющим клиническое значение для большинства клиницистов. Всемирная ассоциация ветеринарной дерматологии (WAVD) разработала рекомендации по передовой практике ухода за кошачьими и собачьими по нескольким темам, включая дерматофитию.Хотя эта статья содержит больше информации, чем потребуется большинству ветеринаров в Новой Англии, она служит хорошим источником рекомендаций по диагностике, вариантам лечения и последующему наблюдению за случаями стригущего лишая почти во всех клинических сценариях. Полный исходный 40-страничный текст и другие подобные материалы доступны бесплатно на сайте www.WAVD.org в разделе дополнительного образования.

Это краткое изложение и обзор с моими субъективными комментариями относительно согласованного заявления из опубликованной выше обзорной статьи в Veterinary Dermatology в конце 2017 года, подготовленной международной группой ветеринарных специалистов в области микологии, дерматологии и клинической диагностики.

На мой взгляд, лучший подход к пациенту с мелким животным с подозрением на дерматофитию должен быть таким же, как и к любому другому дерматологическому пациенту: провести тщательный обзор истории болезни пациента и задать вопросы о недавней истории поездок в районы или регионы с более высоким эндемический риск дерматофитии, чем в Новой Англии, включая вопросы об усыновлении или питомнике.

  • Заболевают ли другие домашние животные и/или люди в доме?
  • Был ли контакт с другими домашними животными с повышенным риском? (персидские кошки, животные из приютов, дикие или амбарные животные, новые котята или щенки, введенные в домохозяйство)
  • Имело ли место недавнее размножение (поскольку спаривание может быть возможным источником воздействия)?

Клинические проявления включают алопецию с обломанными волосами, корками, как правило, не очень зудящий фолликулит или пустулезный дерматит.В тяжелых случаях наблюдаются глубокая пиодермия, фурункулез и дренирующие ходы (фото 2).

Цитата из резюме WAVD: «Дерматофития диагностируется с использованием ряда «несовершенных» дополнительных диагностических тестов, включая лампу Вуда и прямой осмотр для документирования активной инфекции волос, посев дерматофитов методом зубной щетки (фото 1) для диагностики вовлеченных видов грибов и контролировать ответ на терапию и биопсию со специальными грибковыми пятнами для узловых или атипичных инфекций.

Использование лампы Вуда является хорошим, дешевым и минимально инвазивным инструментом, который должен быть под рукой, и считается лучшим инструментом, чем мы обычно думали, для помощи в обнаружении microsporum canis и возможных других форм дерматофитов (фото 3 и 4). Имейте в виду, что отрицательный результат исследования с помощью лампы Вуда не исключает дерматофитию. Чистка зубов шерстяным покровом для сбора образца материала лучше, чем выщипывание нескольких прядей волос для культивирования дерматофитов и/или полимеразной цепной реакции (ПЦР).Использование ПЦР может быть хорошим вариантом для более быстрого получения результатов анализа (3-5 дней в большинстве коммерческих лабораторий). ПЦР имеет хорошую корреляцию в обнаружении и подтверждении вероятной инфекции стригущим лишаем. ПЦР не всегда лучший вариант для мониторинга успеха «микологического излечения». Лучшим вариантом является использование культур и идентификация штаммов грибов. Я предпочитаю отправлять образцы в лабораторию для выращивания и идентификации, а не проводить собственные тесты, где мы можем увидеть огромные различия в чувствительности и специфичности между людьми.

Существует множество протоколов для системного лечения дерматофитии как у собак, так и у кошек, что позволяет адаптировать лечение для каждого пациента. Учитывая различные варианты лечения, рекомендации по лечению можно найти в руководствах WAVD по дерматофитам, в Ветеринарном справочнике Пламба , или обратившись за консультацией в дерматологическую службу Angell. Использование несоставных итраконазола, флуконазола и тербинафина очень эффективно как для собак, так и для кошек. Использование системного кетоконазола, вероятно, должно быть ограничено небеременными или неразмножающимися собаками.Риск побочных эффектов при использовании у кошек, по-видимому, перевешивает потенциальные преимущества, которые включают более низкую стоимость. Использование гризеофульвина должно быть последним средством, поскольку побочные эффекты и мониторинг намного перевешивают любые преимущества по сравнению с более новыми вариантами. Лечение только системным луфенуроном или местным хлоргексидином не считается эффективным и его не следует рекомендовать.

Мы рекомендуем продолжать лечение до тех пор, пока не будут получены 2 отрицательных результата посева с интервалом от 21 до 30 дней.

Ниже приводится краткое изложение согласованных рекомендаций WADV по дерматофитии.Я добавил полужирным шрифтом . Взгляд регионов Новой Англии на этот вопрос, основанный на данных Новой Англии, а также на клиническом опыте, собранном здесь, в Медицинском центре животных Энджелла, от пациентов, направленных нашими коллегами по всему региону.

1) Распространенность и факторы риска

а) Определение истинной региональной предрасположенности к дерматофитии и породной предрасположенности к ней затруднено, поскольку это не спонтанно возникающее заболевание, не подлежит регистрации и не является смертельным заболеванием.Инфекция различается по степени тяжести и проходит без лечения у многих собак и кошек. Все эти факторы искажают данные о предрасположенности к породе и распространенности 90–035 и могут даже меняться со временем.
b) Подкожные дерматофитные инфекции (керионы, миоцитомы и «псевдомиоцитомы», чуть чаще фурункулез из инфицированных волосяных фолликулов, показанный на фото 2) чаще всего сообщалось у персидских кошек и йоркширских терьеров, но, как правило, редко встречаются у кошек и крайне редко у собак.
c) Деятельность рабочих и охотничьих собак может увеличить риск заражения спорами дерматофитов, что приводит к поверхностным и узелковым поражениям. Очень редко в этом регионе, за исключением случаев, когда в течение 12-18 месяцев после путешествия за пределы Новой Англии.
d) Серопозитивный статус FIV и/или FeLV у кошек сам по себе , а не увеличивает риск дерматофитии. Это часто неправильное представление среди владельцев и заводчиков домашних животных.

 2) Диагностическое тестирование

Сумма результатов тестов, сигналов и клинических данных должна давать индекс подозрения на дерматофитию и быть лучшим способом определить, когда лечить или не лечить.

а) Ни один тест не был признан «золотым стандартом».

b) Дерматофития диагностируется с помощью ряда «несовершенных» дополнительных диагностических тестов, включая лампу Вуда и прямой осмотр для подтверждения активной инфекции волос, посев дерматофитов методом зубной щетки ( фото 1 ) для диагностики пораженных видов грибов и контролировать реакцию на терапию и биопсию со специальными грибковыми пятнами для узловых или атипичных инфекций.

c) Дерматоскопия может быть полезным клиническим инструментом с одновременным использованием лампы Вуда или без него для выявления волос для посева и/или прямого исследования. Это требует некоторого привыкания, но может быть полезным инструментом .

d) Обнаружение ДНК дерматофитов с помощью ПЦР может быть полезным, однако положительный результат ПЦР не обязательно указывает на активную инфекцию, так как мертвые грибковые организмы после успешно вылеченной инфекции все же будут обнаружены с помощью ПЦР, как и неинфицированные носители фомита. Не использовать ПЦР в качестве последующего отбора проб или для контроля эффекта лечения .

e) Вопреки распространенному мнению, обследование с помощью лампы Вуда ( фото 3 и 4 ), скорее всего, будет положительным в большинстве случаев canis dermatophytosis, Поэтому используйте лампу Вуда, чтобы оптимизировать свою коллекцию для этого конкретного дерматофита. . Флуоресцирующие волоски (фото 3 ) чаще всего обнаруживаются при нелеченых инфекциях. У пролеченных кошек может быть трудно обнаружить флуоресценцию.Ложноположительные и ложноотрицательные результаты обычно связаны с неподходящим оборудованием, отсутствием увеличения, соблюдением пациентом режима, плохой техникой или отсутствием подготовки. К этому методу нужно немного привыкнуть, но он очень полезен для определения места отбора проб для DTM во время лечения .

f) Мониторинг ответа на терапию включает клинический ответ, использование лампы Вуда, если это возможно, и посев грибков на Тестовую среду для дерматофитов (DTM) . Количество колониеобразующих единиц полезно для мониторинга ответа на терапию. Не используйте ПЦР для контроля эффективности лечения.

g) Отрицательный результат ПЦР у пролеченной кошки совместим с излечением. Отрицательная культура грибка у кошки без поражений и отрицательный результат исследования с помощью лампы Вуда (за исключением светящихся кончиков) совместимы с излечением. ( ЭТО ОЧЕНЬ ВАЖНО ).

3) Местное противогрибковое лечение

a) Нанесение два раза в неделю серной извести, энилконазола ( недоступен в США для использования на животных ) или шампуня с миконазолом/хлоргексидином в настоящее время рекомендуется как эффективное местное лечение генерализованной дерматофитии у кошек и собак.

b) Ускоренные продукты с перекисью водорода ( Accel® TB ), а также шампуни с климбазолом и тербинафином кажутся многообещающими, но не могут быть окончательно рекомендованы до тех пор, пока не будут доступны дополнительные исследования in vivo, подтверждающие эффективность. Рекомендация этого клиентам может быть полезной, но в некоторых случаях может вызвать ложное ощущение эффективности .

c) Шампуни с миконазолом эффективны in vitro, но in vivo наиболее эффективны в сочетании с хлоргексидином. Рекомендация этого клиентам может быть полезной, но в некоторых случаях может вызвать ложное ощущение эффективности .

г) Хлоргексидин в качестве монотерапии малоэффективен и не рекомендуется. Концентрация и/или состав не имеют значения, его не следует использовать в качестве самостоятельного лечения .

e) Для местного лечения клотримазол, миконазол и энилконазол имеют некоторые данные, подтверждающие эффективность. Они рекомендуются в качестве сопутствующего лечения, но не в качестве единственной терапии. Рекомендация этого клиентам может быть полезной, но в некоторых случаях может вызвать ложное ощущение эффективности .

4) Системное лечение

a) Итраконазол (несоставной) , вероятно, является лучшим вариантом для кошек, но может возникнуть анорексия и/или гепатотоксичность. Комбинированный итраконазол оказался нестабильным, а в лучшем случае имеет ненадежную эффективность, поэтому рекомендуется некомпаундированный итраконазол.Вместе тербинафин и итраконазол являются двумя наиболее эффективными и безопасными системными средствами лечения дерматофитии как у кошек, так и у собак, способных переносить эти препараты .

b) Гризеофульвин эффективен, но также имеет больше потенциальных побочных эффектов по сравнению с итраконазолом и тербинафином.

c) Кетоконазол и флуконазол являются менее эффективными вариантами лечения, а кетоконазол имеет больше побочных эффектов. I не рекомендуется использовать их у кошек .

d) Луфенурон обладает нет эффективностью in vitro в отношении дерматофитов, не предотвращает и не изменяет течение дерматофитных инфекций, не повышает эффективность системных или местных противогрибковых средств и не применяется при лечении дерматофитий.

e) Противогрибковые вакцины не защищают от инфицирования, но могут быть полезной дополнительной терапией.

5) Дезинфекция окружающей среды

Это может стать источником значительного разочарования владельцев, поскольку риск рецидива и/или воздействия на человека является сложной темой для многих.

a) Основной целью обеззараживания окружающей среды является предотвращение заражения фомитами и ложноположительных результатов посева грибков.

b) Заражение только из окружающей среды встречается редко.

c) Свести к минимуму контаминацию можно путем клипирования пораженных участков, местной терапии и плановой очистки. Помощь владельцам с инструкциями о том, как настроить карантинную зону дома и управлять ею, может быть полезна в семьях с несколькими домашними животными.Дальнейшее демонстрирование владельцам того, как содержать инфицированных животных отдельно от неинфицированных, может снизить стоимость лечения и тестирования.

d) Заключение необходимо использовать с осторожностью и в течение как можно более короткого времени. Дерматофития — излечимое заболевание, но проблемы с поведением и социализацией могут остаться на всю жизнь, если молодые или только что усыновленные животные не социализированы должным образом. Давая эту рекомендацию, ветеринары должны учитывать благополучие животных и качество жизни.

e) Инфекционный материал легко удаляется из окружающей среды. Если его можно помыть, его можно обеззаразить.

6) Зоонозные факторы

а) Дерматофития является известным зоонозом и вызывает поражения кожи, которые поддаются лечению и излечению.

b) Дерматофитоз является распространенным кожным заболеванием у людей, но истинная скорость передачи от животных людям неизвестна ( также неизвестен риск «обратного зооноза» или зооантропоноза ).

c) У людей преобладающим возбудителем дерматофитов является неживотный возбудитель rubrum , и наиболее частым клиническим проявлением у людей является онихомикоз (то есть «грибок ногтей на пальцах ног»).

d) Наиболее частым осложнением инфекции canis у людей с ослабленным иммунитетом является увеличение времени лечения.

Артикул:

К.А. Мориелло, К. Койнер, С. Патерсон, Б. Миньон. Диагностика и лечение дерматофитии у собак и кошек. Вет Дерматол 2017;28:266-e68.

Фото 1: Зубная щетка и тестовая среда для дерматофитов (DTM)

 

Фото 2: Глубокая пиодермия фокстерьера с дерматофитиями

 

Фото 3: классическая лампа Вуда положительное свечение зеленого яблока

 

Фото 4: Лампа Вуда с опцией увеличения

Дерматофитоз у кошек и собак

Дерматофитозы — распространенное дерматологическое заболевание.С ними может быть сложно справиться, поскольку они дороги в лечении, трудно поддаются контролю и зоонозны. Правильная идентификация с помощью хорошего лабораторного анализа имеет важное значение, при этом культура грибов является золотым стандартом. Знание лекарств, доступных для лечения дерматофитии, полезно, хотя у большинства животных с компетентной иммунной системой дерматофитная инфекция проходит спонтанно. Лечение животных в домохозяйствах с несколькими животными или там, где есть маленькие дети или лица с ослабленным иммунитетом, необходимо из-за очень заразной зоонозной природы этого заболевания.

Дерматофитоз — одно из наиболее распространенных дерматологических заболеваний домашних животных. С этим может быть сложно справиться, поскольку это дорого лечить, трудно контролировать и зоонозно. Правильная идентификация с помощью хорошего лабораторного анализа имеет важное значение, и знание лекарств, доступных для лечения дерматофитии, полезно.

Дерматофитоз чаще встречается у кошек, чем у собак, и распространенность выше в географических районах с теплым и влажным климатом ( Scott et al, 2001 ).

  • Microsporum canis — 90% кошек, больных стригущим лишаем, имеют этот тип, 60% собак, вероятно, заразились им от кошки. Персы генетически предрасположены. (Gaudiano, 2005) ( Рисунок 1 )


    Рис. 1. Наличие очага выпадения шерсти, вызванного M. canis, на морде домашнего короткошерстного котенка.

  • Microsporum gypseum — заражение происходит при контакте с зараженной почвой, редко в Великобритании.Вызывает керион (узелок, сопровождающийся глубокой гнойной воспалительной реакцией)

  • Trichophyton mentagrophytes — переносятся дикими грызунами. Только 30% собак с дерматофитией имеют этот тип, в основном джек-рассел-терьеры, поскольку они склонны нападать на этих грызунов (Gaudiano, 2005) ( Рисунок 2 )


Рисунок 2. Очаговые корки на переносице у йоркширского терьера с инфекцией Trichophyton mentagrophytes.

Большинство человеческих инфекций обусловлены различными Trichophyton ( Mentagrofhytes, Rubrum, Verrucosum, Tonsurans и т. Д.) Или видов Epidermophyton ( Floccosum и т. Д.) ( ExtryBridge, 2006 ; Shaw, 2010 ).

Трансмиссия

Передача происходит при прямом контакте с инфицированными животными или опосредованно через зараженные фомиты (например, подстилку). Заражение происходит, когда артроспоры прикрепляются к верхнему слою эпидермиса, роговому слою.Споры прорастают в грибковые трубки, известные как «гифы», которым помогают ферменты, вырабатываемые грибковыми спорами. Это вызывает воспалительную реакцию, повреждая волосяной стержень и вызывая легкое выпадение волос ( Рисунок 3 )


Рисунок 3. Вдоль стержня волоса видны гифы и артоспоры.

Факторы, участвующие в развитии грибковой инфекции

  • Состояние хозяина — молодость (котята), изнурительная болезнь, ослабленный иммунный статус (из-за болезней или лекарств), плохое питание, стресс

  • Иммунитет хозяина к дерматофитозу (как естественный иммунитет, так и специфический приобретенный иммунитет после инфекции)

  • Инфекционная доза организма.

Клинические признаки дерматофитии

Типичные поражения характеризуются участками алопеции с периферической эритемой, шелушением и коркой. Волосы сломаны и имеют потрепанный вид.

  • Облысение, съеденное молью

  • Диффузная туловищная алопеция

  • Масштабирование

  • Гиперпигментация

  • Алопеция, папуло-пустулезные корки на лице и носу или конечностях

  • Зуд

  • Инфекция копытца

  • Фурункулез подбородка ( Рисунок 4 и Рисунок 5 ).


Рис. 4. Многоочаговые участки выпадения шерсти на морде щенка боксера с инфекцией M. canis.

Рисунок 5. Генерализованная дерматофития у йоркширского терьера.

Поражения могут поражать все тело или локализоваться на голове, ушах, хвосте и передних лапах. У кошек может быть тяжелая воспалительная реакция ( Scott et al, 2001 ).

Диагностика

Существует несколько способов диагностики дерматофитии; Диагноз должен основываться на клиническом анамнезе, внешнем виде и диагностических процедурах.После обучения и практики квалифицированная ветеринарная медсестра может выполнять все следующие диагностические процедуры.

Лампа Вуда

Лампа Вуда — это ручная ультрафиолетовая лампа, которая заставляет инфицированные волосы флуоресцировать яблочно-зеленым цветом. Делать это нужно в полной темноте качественной лампой, прогретой как следует.

Преимущество этого теста заключается в том, что он быстрый, недорогой и позволяет проводить скрининг большого количества домашних животных одновременно.Это также помогает в отборе инфицированных волос для посева/трихограммы.

С отрицательной стороны только 50% штаммов Microsporum canis флуоресцируют, а ложноположительные результаты могут быть вызваны чешуйками, корками, местными препаратами.

Прямые исследования волос (трихограмма)

  • Поместите волосы в 10% раствор гидроксида калия на 5–10 минут для очистки

  • Нанесите на предметное стекло 1–2 капли хлопкового синего лактофенола

    .
  • Нанесите образец на предметное стекло

  • Изучить при увеличении 10X–40X

  • Определите артроспоры/гифы.

Преимущества этой процедуры в том, что можно получить быстрые результаты и она недорогая. С другой стороны, этот процесс занимает много времени, а результаты трудно интерпретировать из-за наличия мусора и сложной структуры нормальных волос. Ложноотрицательные результаты могут быть получены, если исследуются непораженные волосы.

Культура грибов

  • Соберите волосы и чешуйки с периферии поражения или волосы, которые флуоресцируют, с помощью стерильной щетки, расчесывая все животное, если у него нет поражений.Нанесите образец на тестовую среду для дерматофитов (DTM) или декстрозный агар Сабуро (SDA) ( , рис. 6, ). DTM представляет собой АСД с добавлением циклогексимида, гентомицина и хлортетрациклина для предотвращения роста грибковых и бактериальных загрязнений. Некоторые содержат цветной индикатор, помогающий продемонстрировать присутствие дерматофитов

    .


    Рисунок 6. Грибковые чашки со средой для тестирования дерматофитов и круглая щетка (щетка Маккензи) для сбора образцов.

  • Инкубировать в течение 3 недель при 27°C (большинство дерматофитов растут в течение 7–14 дней, но для уверенности выдерживают в течение 3 недель)

  • Ежедневно проверяйте наличие белых пушистых наростов ( Рисунок 7 )


    Рис. 7.Грибковая пластинка с несколькими колониями M. canis

  • Используйте ацетатную ленту для отбора проб колонии, поместите на предметное стекло с 1–2 каплями лактофенолового хлопкового синего ( рис. 8 )


    Рис. 8. Наличие макроконидий в образце, взятом из колонии M. canis и окрашенном хлопковым синим лактофенолом.

  • Осмотрите в 10-40-кратном увеличении. Как правило, можно увидеть много длинных нитей гиф грибов и, по крайней мере, несколько макроконидий (спор).

Получение отрицательных результатов может занять до 4 недель, а ложноотрицательные результаты могут быть получены, если образцы инкубируются при неправильной температуре.

Биопсия кожи

Гистопатологическое исследование может подтвердить диагноз примерно в 75% случаев ( Mignon, 2008 ), но оно не более чувствительно, чем микроскопическое исследование волос и чешуек, и требуется редко.

Лечение

Перед началом лечения следует учесть, что у большинства животных с адекватной иммунной системой дерматофитная инфекция проходит спонтанно без лечения.

Дерматофития является высококонтагиозной и зоонозной по своей природе. По этой причине всегда следует лечить животных в семьях с несколькими домашними животными или в домах с маленькими детьми или людьми с ослабленным иммунитетом.

Поскольку кошки могут выглядеть клинически здоровыми, но могут быть хроническими носителями, важно обследовать и культивировать всех животных, находившихся в контакте, систематически лечить всех животных положительными культурами и одновременно обеззараживать окружающую среду.

Во время лечения грибковую культуру следует повторять каждые 2 недели до получения 2–3 последовательных отрицательных культур.

Подрезка

Целью этого простого лечения является предотвращение дальнейшего загрязнения окружающей среды и облегчение местной терапии. Преимущества этого лечения заключаются в том, что удаление инфицированных волос сводит к минимуму загрязнение окружающей среды пациента, но загрязняет только область, где выполняется стрижка. Стрижка стимулирует рост новых волос, выталкивая старые больные волосы, и делает терапию шампунем более эффективной.

С другой стороны, болезнь может ухудшиться через 7–10 дней после стрижки, если очаги распространяются из-за микротравм, вызванных машинкой для стрижки.

Обработка окружающей среды

  • Тщательно пропылесосьте все места, где было животное, а затем утилизируйте вакуумные пакеты (если они использовались)

  • Выбросить постельное белье, щетки и игрушки, которые могут образовывать фомиты

  • Экологический спрей или генератор дыма Enilconazole лицензирован для использования в питомниках в некоторых частях Европы.

Местная терапия (полоскания или кремы)

Основной целью местной терапии является уничтожение грибковых элементов на шерсти и снижение дальнейшего заражения ( Morriello, 2003a

Первоначально сообщалось о непредсказуемой токсичности при использовании энилконазола у кошек, поэтому следует соблюдать осторожность.Предполагается, что токсичность связана с пероральным приемом пищи после полоскания. В одном исследовании 22 персидских кошек, получавших энилконазол, у 6 развился повышенный уровень аминотрансферазы аланина в сыворотке крови и у одной развилась преходящая мышечная слабость ( Hnilica, 2002 ).

  • Известковая сера (LimePlus Dip ® , DermaPet) оказалась эффективной и безопасной ( Newbury et al, 2007 ). Его следует использовать с интервалом в 5–7 дней. Разрешен для использования у собак, кошек и лошадей.

  • Противогрибковые кремы не рекомендуются, так как местная терапия должна быть общей, а не локальной.

Преимущества местной терапии заключаются в том, что она ограничивает распространение и уменьшает заражение. Известковая сера очень безопасна и может использоваться беременными и кормящими кошками, котятами/собаками и щенками в возрасте от 2 до 3 недель. Энилконазол очень эффективен ( Hnilica, 2002 ).

С другой стороны, местная терапия может вначале усугубить заболевание, поэтому важно быть бережным и тщательно вытирать пациента, поддерживая его в тепле до тех пор, пока он не высохнет.Погружения/полоскания отнимают много времени. При применении энилконазола следует контролировать ферменты печени (см. выше).

Лечебный шампунь

Использование в качестве дополнительной терапии шампуня с миконазолом/хлоргексидином (Malaseb ® , Dechra) может облегчить воспалительную реакцию и уменьшить загрязнение окружающей среды. Шампунь с миконазолом и хлоргексидином (Malaseb ® ) был недавно изучен на кошках в качестве дополнительного лечения к пероральному приему гризеофульвина ( Paterson, 1999 ).Кошки, получавшие шампунь + гризеофульвин, визуально восстанавливались примерно с той же скоростью, что и кошки, получавшие только гризеофульвин. Тем не менее, у кошек, получавших шампунь + гризеофульвин, отрицательные грибковые культуры были достигнуты намного быстрее, чем у кошек, получавших только гризеофульвин. Данные in vitro ясно показывают, что существует синергизм между этими двумя ингредиентами для некоторых штаммов грибов-дерматофитов.

Системное лечение

Системное лечение является методом выбора, так как было показано, что оно снижает продолжительность и тяжесть дерматофитии кошек.Существует ряд доступных системных методов лечения.

Гризеофульвин

Гризеофульвин — фунгистатический противогрибковый препарат. Его следует принимать внутрь в течение 6–8 недель. Его трудно получить во многих странах. Не лицензирован в Великобритании.

  • Кошачья доза. Микроразмер = 25 мг/кг SID или разделить на два приема в день. Ультрамикроразмерный = 5–10 мг/кг/день

  • Доза для собак. Микроразмер = 50–100 мг/кг/день. Ультрамикроразмерный = 10–30 мг/кг/день

  • Не применять кошкам с положительным FIV, беременным животным или животным в возрасте до 6 недель

  • Давать с жирной пищей (например,грамм. Hills a/d) для усиления поглощения

  • Побочные эффекты включают рвоту и/или диарею, анорексию, угнетение функции костного мозга, неврологические симптомы

  • Рекомендуйте владельцам носить перчатки при введении препарата.

Итраконазол

В низких дозах итраконазол оказывает фунгистатическое действие, в высоких дозах – фунгицидное (Итрафунгал ®

  • Для кошек раствор для приема внутрь 10 мг/мл

  • 5–10 мг/кг один раз в день через неделю, некоторые кошкам может потребоваться 10 мг/кг один раз в день, каждый день, если они не реагируют на лечение

  • Проблемы с токсичностью кажутся редкими

  • Для собак доза 5 мг/кг один раз в день может использоваться без лицензии.

Тербинафин

Тербинафин (Ламизил ®

Луфенурон

Луфенурон (программа ® Novartis) больше не рекомендуется для лечения или профилактики, поскольку в недавних исследованиях он не смог предотвратить или изменить течение инфекции ( Zur and Elad, 2006 ).

Вакцинация

Разработаны эффективные профилактические вакцины для крупного рогатого скота и пушных зверей. Однако на сегодняшний день вакцины, разработанные для применения у кошек и собак (и, возможно, у лошадей), не показали профилактического эффекта (, Скотт и др., 2001, ), а скорее способствовали исчезновению клинических признаков у уже инфицированных животных.Это лечение, а не профилактика; такое лечение может привести к клиническому улучшению, но не обязательно к микологическому излечению. Некоторые авторитетные лица сомневаются в их полезности, поскольку они могут вызвать преждевременное прекращение лечения, такого как местные препараты и т. д., которые важны для полного инфекционного контроля ( Westhoff et al, 2010 ).

Мониторинг лечения

При лечении M.canis важно следить за тем, чтобы убедиться, что он работает, и знать, когда пациент излечивается.Это делается с помощью еженедельных грибковых культур. Ранее рекомендовалось начинать мониторинг через 4 недели лечения, теперь рекомендуется начинать мониторинг лечения один раз в неделю на протяжении всего лечения ( Moriello, 2003b ).

При использовании протокола итраконазола и извести-серы лечение следует продолжать до получения двух последовательных отрицательных культур. Помните, что посев показывает, что происходило на коже пациента в день посева. Держите все культуры в течение 21 дня.Пациент вылечен, если у него два последовательных отрицательных еженедельных посева. В большинстве случаев можно рассчитывать на лечение пациента в течение не менее 30 дней, если итраконазол и известковая сера используются два раза в неделю. При использовании любого другого протокола не отпускайте пациента до тех пор, пока не будет получено три отрицательных результата посева с недельным интервалом.

Причины неэффективности лечения

Существует ряд возможных причин неэффективности лечения. Неправильный диагноз, повторное заражение через загрязненную среду или других инфицированных животных, устойчивые микроорганизмы, сопутствующие заболевания, такие как гипертиреоз, сахарный диабет, неоплазия или отказ от стрижки шерсти у длинношерстных кошек, могут привести к неудаче лечения.Поэтому важно контролировать лечение. Улучшение должно наступить через 2-4 недели после начала терапии.

Предотвращение повторного заражения

В целях предотвращения повторного заражения культурой всех новых питомцев добавляют в дом, а кошек держат внутри.

Роль ветеринарной медсестры

Ветеринарные медсестры могут играть активную роль в диагностике и лечении дерматофитии, а благодаря обучению и практике выполнять сложную и полезную роль медсестры-дерматолога.Понимая предмет, они могут дать клиентам бесценный совет и, таким образом, помочь уменьшить количество животных, пораженных этим зоонозным дерматологическим заболеванием.

Заключение

Понимая различные клинические признаки дерматофитии и помогая проводить диагностические тесты, ветеринарная медсестра может оказать большую помощь ветеринарному хирургу в постановке диагноза.

Культура грибов остается золотым стандартом диагностических тестов, несмотря на то, что результаты не могут быть получены немедленно.Более быстрые результаты можно получить с помощью трихограммы, хотя для обеспечения точности требуются обучение и практика.

Мультимодальное лечение как пациента, так и окружающей среды необходимо для обеспечения успеха лечения и предотвращения повторного заражения.

Есть надежда, что в будущем будет разработана профилактическая вакцина, которая значительно сократит число кошек и собак, у которых диагностировано это трудноизлечимое зоонозное дерматологическое заболевание.

Ключевые моменты

  • Дерматофитоз — распространенное дерматологическое заболевание, встречающееся у домашних животных.

  • У большинства животных с адекватной иммунной системой дерматофитная инфекция проходит спонтанно без лечения.

  • Дерматофития является высококонтагиозной и зоонозной по своей природе. По этой причине всегда следует лечить животных в домах с несколькими домашними животными или в домах с маленькими детьми или людьми с ослабленным иммунитетом.

Скачать сейчас

Руководство ABCD по профилактике и лечению

ОБЗОР: Дерматофития, обычно вызываемая Microsporum canis, является наиболее распространенной грибковой инфекцией у кошек во всем мире и одним из наиболее серьезных инфекционных заболеваний кожи у этого вида.Многие взрослые кошки являются бессимптомными носителями. Тяжелые клинические признаки наблюдаются в основном у котят или взрослых с ослабленным иммунитетом. Плохая гигиена является предрасполагающим фактором, и болезнь может быть эндемичной в приютах или питомниках. Люди могут легко заразиться, и у них может развиться подобное кожное заболевание. ИНФЕКЦИЯ: Инфекционные артроспоры, продуцируемые дерматофитами, могут сохраняться в окружающей среде около года. Они передаются при контакте с больными кошками или здоровыми носителями, а также с частицами пыли, щетками, одеждой и другими фомитами.ПРИЗНАКИ ЗАБОЛЕВАНИЯ: типичны циркулярная алопеция, шелушение и иногда эритематозные края вокруг центрального заживления («стригущий лишай»). У многих кошек это самокупирующееся заболевание, проявляющееся только выпадением шерсти и шелушением. У животных с ослабленным иммунитетом результатом может быть многоочаговое или генерализованное кожное заболевание. ДИАГНОЗ: Исследование с помощью лампы Вуда и микроскопическое обнаружение артроспор на волосках являются простыми методами подтверждения заражения M. canis, но их чувствительность относительно низкая. Золотым стандартом для обнаружения является посев на агар Сабуро волосков и чешуек, собранных из новых поражений.ВЕДЕНИЕ ЗАБОЛЕВАНИЙ: В приютах и ​​питомниках искоренение затруднено. Существенным является сочетание системного и местного лечения в течение нескольких недель. Для системной терапии препаратом выбора является итраконазол, альтернативой является тербинафин. Рекомендуемое местное лечение — повторное полоскание тела раствором энилконазола или миконазолом с хлоргексидином или без него. В питомниках/приютах лечение должно сопровождаться интенсивной дезактивацией окружающей среды. ВАКЦИНАЦИЯ: Было опубликовано несколько исследований эффективности вакцин против M canis (профилактических или терапевтических) для кошек, а безопасная и эффективная вакцина недоступна.

Не позволяйте стригущему лишаю ходить кругами вокруг ваших ветеринарных пациентов

Вы следите за последними ветеринарными разработками в области лечения стригущего лишая? (Подсказка: в вашем распоряжении новый диагностический тест и новое лекарство от дерматофитии.)

Типичное поражение стригущим лишаем на морде кошки. (Все изображения предоставлены доктором Антеей Шик) Дерматофития, или стригущий лишай, представляет собой грибковую инфекцию, вызываемую поедающими белок грибами, которые вторгаются в волосяной стержень и на поверхность кожи.Существует много видов стригущего лишая, но чаще всего вы сталкиваетесь с грибами Microsporum canis у кошек и видов Microsporum gypseum и Trichophyton у собак.

Предрасполагающие факторы

Стригущий лишай гораздо чаще встречается у кошек, чем у собак, и персидские кошки, по-видимому, предрасположены. Собаки со стригущим лишаем, вероятно, заразились при копании. Бостонские терьеры, йоркширские терьеры и джек-рассел-терьеры склонны к стригущему лишаю.

К стригущему лишаю предрасположены как молодые, так и пожилые пациенты, а также пациенты с ослабленным иммунитетом и аллергики.

Это поражение стригущим лишаем на морде у молодой собаки типично для грибкового кериона, который представляет собой стригущий лишай с обильной воспалительной реакцией, напоминающей абсцесс.

Питбуль с генерализованной дерматофитией. Обратите внимание на границу между пораженной и нормальной кожей. Клинические признаки

Дерматофитию стали называть стригущим лишаем из-за характерной круглой области выпадения волос с красным приподнятым внешним ободком.Эти поражения возникают в результате воспалительной реакции на грибок. Лицо, уши, ноги и хвост являются наиболее часто поражаемыми областями. Стригущий лишай может быть более обширным, вызывая четко очерченную алопецию, эритему, зуд и шелушение. У собак часто имеется четко очерченная граница пораженной и непораженной кожи. Кошки, особенно длинношерстные породы, имеют более генерализованную форму инфекции, чем собаки. Эти животные могут быть хроническими переносчиками грибка, даже если сами не проявляют признаков инфекции.

 

Диагностика

Посев грибков (с использованием тестовой среды для дерматофитов [DTM]) или полимеразная цепная реакция грибков (ПЦР) необходимы для определения вида стригущего лишая, поражающего вашего пациента. Тем не менее, обследование с помощью лампы Вуда или непосредственное обследование волос может помочь вам выявить и вылечить случаи стригущего лишая.

Кошка, зараженная M. canis , демонстрирует флуоресценцию отдельных волосков под лампой Вуда.Лампа Вуда

У пациентов с известной инфекцией M. canis или с вероятностью инфекции M. canis можно использовать лампу Вуда, чтобы определить, какие волосы взять для посева или ПЦР. проверить или рассмотреть под микроскопом. M. canis флуоресценция ярко-яблочно-зеленая, инфицированные волоски светятся от луковицы до кончика. Не все виды стригущего лишая будут флуоресцировать, поэтому отрицательная флуоресценция не исключает дерматофитии.

Осмотр с помощью лампы Вуда также может помочь вам контролировать реакцию пациента на лечение. Если пациент получает противогрибковую терапию, количество положительных на лампу Вуда волос должно быть меньше, а локализация флуоресценции должна прогрессировать от основания волоса к кончику по мере отрастания волос.

Иммерсионное увеличение волос, инфицированных стригущим лишаем. Обратите внимание на неравномерный вид кутикулы волоса, вызванный гифами и микроконидиями. Прямой осмотр

Для прямого осмотра поместите волосы, выщипанные из пораженного участка (или волоски, положительные на лампу Вуда) в минеральное масло, накройте покровным стеклом и осмотрите. под 10-кратным увеличением.Зараженные волосы могут иметь грибковые гифы внутри волосяного стержня или небольшие круглые микроконидии снаружи инфицированного волоса. Вы можете подготовить липкую ленту подозрительного участка и окрасить его лактофеноловым хлопковым синим или фиолетовым модифицированным красителем Райта (Diff-Quik-Dade Behring).

Споры стригущего лишая выглядят круглыми или яйцевидными и немного напоминают нераспустившиеся виды Malassezia . Они также часто выглядят так, будто вокруг них прозрачные капсулы.

Саб-Дуэт от Hardy Diagnostics показывает положительный рост для М.Canis. Культивирование

Чтобы вырастить виды стригущего лишая в DTM, захватите отдельные сильно аномальные волоски (или положительные на лампу Вуда волоски) в направлении роста и осторожно потяните, пытаясь достать корневую луковицу. Затем аккуратно вдавите волосы в DTM.

Вы также можете использовать технику щетки Маккензи, при которой вы протираете новой зубной щеткой или чистой марлей весь пораженный участок до тех пор, пока волосы не станут отчетливо видны в щетине щетки или на поверхности марли. Обязательно берите пробу возле глаз, в ушах и между пальцами ног.Затем аккуратно проткните щетиной или прижмите марлю по всей поверхности культуральной пластины.

В идеале температура инкубации должна оставаться в пределах от 75 F (23,9 C) до 80 F (26,7 C), и вы должны ежедневно проверять чашки на предмет роста грибковых культур.

Наросты стригущего лишая выглядят белыми или желтовато-коричневыми (никогда не темными), а по мере роста вокруг них появляется красный цвет. Большинство видов стригущего лишая растут и образуют споры в течение 7-10 дней, но культурам видов Trichophyton часто требуется до 21 дня.Планшеты должны храниться не менее 14 дней, но предпочтительнее 21 день.

Соберите образец ленты из подозрительных колоний, окрасьте лактофеноловым хлопковым синим или фиолетовым модифицированным красителем Райта (Diff-Quik-Dade Behring), а затем исследуйте при 10-кратном увеличении, а затем при 40-кратном увеличении на наличие макроконидий.

M. Canis Macroconidia

Regworm RealPCR Панель

Группа Regworm RealPCR (IDExx Laboratories) включает Microsporum и TRICHOPHYTONTONTONTOR видовых тестов PCR и выполняет с более чем 95% чувствительностью и 99% специфичность.Результаты доступны в течение одного-трех рабочих дней, поэтому они могут быть полезны для диагностики пациентов, которых вы хотите начать лечить немедленно.

У вас есть несколько вариантов отправки образцов.

Используйте зубную щетку с мягкой щетиной, чтобы расчесать подозрительное поражение, затем положите зубную щетку в пластиковый пакет для хранения многоразового использования.

Выщипывайте волосы с фолликулами, приподнимайте или удаляйте корки или выполняйте соскобы кожи с активной границы подозрительного поражения, а затем помещайте собранные предметы в пробирку с красной крышкой.

Соскобы или обрезки ногтевого ложа отправляйте в запечатанном пакете с грибком или в стерильном контейнере.

Ложноположительные результаты возможны при мониторинге во время лечения стригущего лишая, поскольку ПЦР достаточно чувствительна, чтобы улавливать споры из окружающей среды. Используйте лампу Вуда для определения подходящих образцов волос, чтобы снизить вероятность ложноположительного результата.

Недавно я наблюдал несколько случаев стригущего лишая, в которых результат ПЦР на грибок был отрицательным, а результат DTM был положительным.Эти несоответствия могли быть вызваны различиями в выборке, но сейчас мы проводим как ПЦР на стригущий лишай, так и посев грибков.

 

Лечение

Лечение стригущего лишая требует сочетания системной или местной терапии и управления окружающей средой. Это означает, что вы, ваша команда и владельцы должны работать вместе.

Для контроля за ходом лечения выполняйте повторный посев через одну-три недели после начала терапии и затем каждые одну-три недели.Продолжайте лечение, пока не получите две или три отрицательные культуры. Продолжительность лечения варьируется и может занимать от 14 дней до шести месяцев. У здоровых пациентов спонтанное разрешение может произойти в течение трех месяцев.

препаратов

Fluconazole

Собаки: 5 до 10 мг / кг устно, два раза в день

кошек: 50 мг / кошка устно, один раз в день

ITRACONAZOLE

Собаки и кошки: 5 мг/кг перорально, один раз в день в течение семи дней, затем прекратить на семь дней; повторите рисунок три раза

Наконечники с итраконазолом:

Избегайте подщелачивающих средств.

Активность аланинаминотрансферазы и щелочной фосфатазы в сыворотке может повышаться без признаков заболевания печени, хотя гепатотоксичность встречается редко.

Дженерики и препараты итраконазола не рекомендуются.

Я был впечатлен эффективностью и простотой введения новой формы итрафунгола (Elanco).

Тербинафин

Собаки: от 30 до 35 мг/кг перорально, один раз в день

Кошки: 20 мг/кг перорально, один раз в день не.

Исследование показало, что терапия тербинафином в сочетании с еженедельным обработкой известково-серным раствором избавляет кошек от стригущего лишая за три недели.1

Сравнительных исследований эффективности итраконазола и тербинафина не проводилось.

Средства для местного применения

Эти капли или промывания можно наносить один или два раза в неделю:

Известково-серный (1:16)

Энилконазол (1:100)

Ускоренное полоскание перекисью водорода (1:20)

Мусс с климбазолом

Шампунь с кетоконазолом (1% или 2%)

Шампунь с миконазолом (1% или 2%)

Контроль окружающей среды

Стригущий лишай является зоонозным заболеванием, поэтому проинструктируйте владельцев мыть руки после контакта с домашними животными .Если возможно, владельцы должны изолировать инфицированных животных от неинфицированных животных. Другие домашние животные в доме должны быть либо проверены, либо, если симптомы не проявляются, их можно купать один раз в неделю с противогрибковым шампунем.

Для обеззараживания своих домов владельцы должны очищать все непористые поверхности разбавленным отбеливателем (1:10), Rescue (ускоренная перекись водорода), универсальным чистящим средством Lysol или универсальным чистящим средством Formula 409 два раза в неделю. Места с ковровым покрытием, где содержатся зараженные стригущим лишаем животные, следует ежедневно пылесосить.Все другие поверхности пола, а также стены следует еженедельно протирать сухой подметальной салфеткой Swiffer Sweeper, поскольку их электростатический характер помогает привлекать споры. Любые постельные принадлежности или мягкие предметы, которые трудно чистить, в том числе кошачьи деревья, следует выбросить. Если постельное белье легко чистить, стирайте его раз в неделю горячей водой с небольшим количеством отбеливателя или Oxyclean.

Для получения подробных инструкций о том, как владельцы могут дезинфицировать свои дома, ознакомьтесь с этим раздаточным материалом для клиентов.

Для пациентов, инфицированных Trichophyton mentagrophytes , рекомендуется сокращение времени пребывания в густонаселенных местах обитания грызунов или борьба с грызунами.Если грызунов содержат в качестве домашних питомцев, вы можете проверить их на предмет переноса с помощью зубной щетки.

Владельцы пациентов, инфицированных M. canis , должны оценить всех своих кошек и собак как потенциальных носителей. В случае положительного результата их питомцев можно лечить местными препаратами, с пероральными препаратами или без них. Если владелец может вылечить пораженную собаку, осуществите адекватный контроль окружающей среды; у неклинически положительных питомцев после еженедельного противогрибкового купания могут быть отрицательные результаты посева/ПЦР.

Защитите свою клинику от стригущего лишая

Предотвратите заражение в своей клинике путем изоляции пациентов с дерматофитами от других пациентов. Надевайте перчатки во время осмотра и меняйте халаты или лабораторные халаты, прежде чем увидеть других пациентов. Очистите все непористые поверхности в кабинетах для осмотра отбеливателем 1:10, Rescue (ускоренная перекись водорода), универсальным очистителем Lysol или универсальным очистителем Formula 409.Мориелло К.А., Койнер К., Триммер А. и др. Лечение приютских кошек пероральным приемом тербинафина и одновременным полосканием известково-серным раствором. Vet Dermatol 2013;24(6):618-620.

2. Мориелло К.А., Койнер К., Патерсон С. и соавт. Диагностика и лечение дерматофитии у собак и кошек.: Клинические согласованные рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии. Vet Dermatol 2017;28(3):266-e68.

 

Anthea Schick DVM, DACVD, практика в Дерматологии для животных в Темпе, Аризона.

Стригущий лишай у кошек

август 2019 г.

Зрительская аудитория: Высшее руководство, воспитатели, общественность, сотрудники приютов/спасателей и волонтеры, команда ветеринаров

Стригущий лишай (дерматофития) — это распространенное кожное заболевание у кошек, которое очень заразно для других домашних животных и людей. Дети и люди с ослабленным иммунитетом (например, больные ВИЧ/СПИДом, больные раком, пациенты, принимающие иммунодепрессанты) особенно восприимчивы к стригущему лишаю.Этот веб-сайт рассматривает стригущий лишай с точки зрения общественного здравоохранения: CDC: Healthy Pets Healthy People: Стригущий лишай

Кошки со стригущим лишаем могут иметь или не иметь видимых поражений кожи. Те, у кого есть видимые поражения кожи, обычно имеют шелушащиеся залысины в основном на голове, ушах и ногах.

Что вы можете сделать

  • Вашей кошке требуется ветеринарная помощь. Стригущий лишай, если его не лечить, может прогрессировать и/или может увеличить вероятность распространения среди других домашних животных и людей.
  • Ваша кошка должна быть изолирована от посетителей, людей с ослабленным иммунитетом и других домашних животных, пока инфекция стригущего лишая не исчезнет.
  • Свяжитесь со всеми посетителями и другими членами семьи, которые вступали в непосредственный контакт с вашей кошкой. Если они обнаружат у себя какие-либо поражения кожи, им следует обратиться к врачу.
  • Родители или опекуны должны внимательно следить за детьми, вступившими в непосредственный контакт с вашей кошкой. Если у детей обнаружены какие-либо поражения кожи, их следует показать врачу.
  • Обратитесь за консультацией к ветеринару, если кто-либо из ваших питомцев контактировал с вашей кошкой напрямую.
  • Профилактика распространения стригущего лишая и дезинфекция окружающей среды очень важны. Споры стригущего лишая очень трудно вывести с ковра и мебели. Лучше всего ограничить всех домашних животных, больных стригущим лишаем, одной небольшой комнатой в доме, которую можно легко продезинфицировать (например, без ковра, без тканевой мебели).
  • Все, кто работает с вашей кошкой, должны соблюдать меры предосторожности, например, носить перчатки и рубашку с длинными рукавами, мыть руки и пылесосить/дезинфицировать места, в которых находилась ваша кошка.
  • Бытовые чистящие средства не эффективно убивают споры стригущего лишая. Дезинфекцию следует проводить хлорным отбеливателем, разбавленным 1:10 (1 ½ чашки на 1 галлон воды), и следует соблюдать осторожность, чтобы не подвергать домашних животных или людей воздействию паров хлорного отбеливателя.
  • На этом веб-сайте можно найти отличные советы по дезинфекции: eHow: How to Disinfect for Ringworm.

Причина стригущего лишая

  • Стригущий лишай, несмотря на свое название, не имеет ничего общего с глистами. Стригущий лишай — это грибковая инфекция (дерматофития), которую можно диагностировать с помощью лампы Вуда (стригущий лишай светится флуоресцентно-зеленым цветом), грибковой культуры или лабораторного анализа.

Лечение стригущего лишая

  • Наиболее эффективным методом лечения стригущего лишая у кошек является окунание в лайм в сочетании с пероральными противогрибковыми препаратами.
  • Другие методы лечения включают нанесение местного противогрибкового крема и купание с противогрибковым шампунем.
  • Было показано, что программа
  • (люфенерон) неэффективна против стригущего лишая.
  • Окунать кошек в лайм может быть сложной задачей! В следующем видео есть несколько полезных советов: Austin Pets Alive!: обучение лечению стригущего лишая у кошек.

Полезные ссылки

Дерматофития (стригущий лишай) — The Skin Vet

 

Дерматофитоз, широко известный как стригущий лишай, представляет собой поверхностное грибковое заболевание кожи, наблюдаемое у кошек и собак. Это редко встречается у этих домашних животных в Великобритании, но часто гипердиагностируется как владельцами домашних животных, так и ветеринарным персоналом. Но это важное кожное заболевание, потому что оно заразно, инфекционно и антропозоонозно (может передаваться между животными и людьми, а не только от животных к людям, но и наоборот).Медицинские работники-люди регулярно «диагностируют» очаги стригущего лишая у своих пациентов, только путем клинического осмотра, без каких-либо лабораторных анализов, а затем ошибочно обвиняют домашних животных пациентов в том, что они являются основным источником их инфекции. Наиболее распространенные возбудители мелких животных относятся к родам Microsporum и Trichophyton .

Ни один диагностический тест не определен в качестве золотого стандарта. Осмотр с помощью лампы Вуда с подогревом и прямая микроскопия являются важными первоначальными скрининговыми тестами, но они нечувствительны.Все котята и кошки, а также молодые щенки и взрослые особи предрасположенных пород собак во время обследования будут обследованы с помощью новой ультрафиолетовой лампы Daray Medical Wood.

УФ-лампа Daray Medical Wood

Внутренние культуры (ChroMyco Duo® – Тестовая среда для дерматофитов плюс среда для улучшенного спорообразования), внешняя лабораторная культура (декстрозный агар Сабуро) и микроскопическая идентификация после роста и макроскопического исследования (опытный миколог) и/или ПЦР-тестирование следует использовать для принятия решения из этого условия, если подозрения высоки.

Для успешного лечения всегда требуется одновременное применение системных пероральных противогрибковых препаратов в дополнение к местной дезинфекции шерсти. Этот последний аспект управления в сочетании с физической очисткой является наиболее важным для обеззараживания подверженной воздействию окружающей среды, чтобы уменьшить заражение и повторное заражение. Только один системный противогрибковый раствор для перорального применения лицензирован для кошек, а пероральный противогрибковый препарат наконец-то лицензирован в Великобритании для собак, оба из которых имеют широкий запас безопасности.

Наконец, серьезные осложнения при передаче вируса от животного к человеку чрезвычайно редки.

  Клинические согласованные рекомендации Всемирной ассоциации ветеринарной дерматологии

В этом документе представлен обзор существующей литературы и представлены согласованные рекомендации для ветеринарных врачей и неспециалистов по диагностике и лечению дерматофитии у кошек и собак.

Эта статья доступна для всех бесплатно и любезно размещена в онлайн-библиотеке Wiley: DOI: 10.1111/вде.12440

Журнал ветеринарной дерматологии, июнь 2017 г.

Добавить комментарий

Ваш адрес email не будет опубликован.