Содержание

Эктопаразиты: бороться или сосуществовать?

Кандидат биологических наук, сотрудник лаборатории мониторинга биоразнообразия Биологического института ТГУ Мария Владимировна Орлова – единственный специалист в России, занимающийся изучением эктопаразитов рукокрылых. Эктопаразиты, в частности, клещи живут на поверхности тела животных и человека и сами часто являются переносчиками бактериальных инфекций и вирусов. Летом 2020 года Марии Владимировне удалось обнаружить крайне редкий вид клеща – Spinturnix scuticornis – в совершенно необычных условиях. Клещ был снят с гималайской ночницы, которая провела последние 20 лет в спиртовом растворе в Зоологическом музее МГУ.

Сегодня мы поговорим о том, как происходят подобные открытия и почему результаты таких исследований крайне важны как в глобальных масштабах, так и для Сибири, где каждый весенне-летний сезон жители сталкиваются с серьёзной опасностью со стороны почти невидимого врага.

Мария Владимировна, как вам удалось совершить своё открытие?

Конечно, чаще всего мы работаем с живым материалом. Летучие мыши – группа в значительной степени охраняемая, поэтому сбор паразитов с этих животных ведется прижизненно: мышь поймали, сняли паразитов и отпустили. В случаях, если нет прижизненного материала (например, животное вымерло на изучаемой территории) или если не получилось выехать на полевые работы, как в этом году, можно обследовать имеющийся заспиртованный материал. Самая большая коллекция таких рукокрылых в России, насколько мне известно, находится в МГУ. Не имея возможности провести полноценные полевые работы, я отправилась в командировку к нашим московским коллегам. Никаких гарантий того, что на давно умерших животных окажутся паразиты, не было. Но была надежда на то, что в складках крыльев можно найти крепко зацепившихся паразитов. «Своего» клеща я обнаружила на животном с романтическим названием «гималайская ночница», привезённой когда-то из Вьетнама.


Оказалось, что подобный клещ не был зафиксирован на территории этого государства, да и в мире его удалось обнаружить лишь в четвёртый раз за всю историю изучения эктопаразитов. Поэтому он почти совсем не изучен, не известен его ареал обитания, не ясно, кто основной хозяин.  

Насколько важны такие открытия и чем примечателен именно этот клещ?

С одной стороны, открытие полезно, в первую очередь, для территории, на которой найден паразит. Оно проясняет список векторов, то есть членистоногих, способных быть переносчиками того или иного заболевания. Список фауны, в том числе, видов паразитов – это основа основ для исследования потенциальной бактериологической и вирусной опасности, угрожающей жителям данной местности. Сначала мы должны понять, что на территории государства обитает, а уже потом изучать всё остальное. Сейчас мы как раз работаем над созданием такого фаунистического списка.


С другой стороны, опыт этого года показал, насколько важны исследования локальной фауны для всего человечества: при открытых граница, особенно, когда речь идёт о странах с высоким туристическим потоком, местная проблема очень быстро может превращаться в опасность мирового масштаба. Китай нам чётко продемонстрировал, как недостаток знаний о рукокрылых может привести к глобальной катастрофе. А ведь на территории Юго-Восточной Азии остается большое количество территорий, до которых у исследователей пока «не дошли руки».

Что касается вирусных возбудителей рукокрылых, на сегодняшний день возможность их передачи с помощью векторов (членистоногих – клещей, блох и так далее) довольно слабо изучена.  Описано очень малое количество вирусов, ассоциированных с эктопаразитами рукокрылых. Из-за этого мы пока не можем сказать, как эта группа участвует в циркуляции тех или иных болезней. Но то, что участвует, — это совершенно точно! 

Как происходит сам процесс исследования уже заспиртованных эктопаразитов?

Крупных клещей рекомендуется несколько часов отмачивать в щёлочи. После того, как сходит избыточная склеротизация и частично растворяется внутреннее содержимое, их промывают в воде и отправляют в специальный раствор – жидкость Фора-Берлезе. В нём клещ окончательно просветляется, растворяются все внутренние органы, а щитки и щетинки внешнего хитинового скелета становятся четко различимыми. Дальше клеща можно изучать под микроскопом и по конфигурации щитков и расположению щетинок определять его видовую принадлежность. Или описывать новый вид, если он не соответствует ни одному из известных описаний.  

А как можно определить, переносчиком каких заболеваний он может быть?

Для этого клеща нельзя помещать в щёлочь, так как у него разрушится ДНК, и мы не сможем узнать, какие бактерии и вирусы содержатся внутри. Такой экземпляр должен стать материалом для ПЦР (полимеразно-цепной реакции), позволяющей многократно воспроизвести отдельные фрагменты ДНК образца и выявить, какую инфекцию он может содержать в себе.  В случае с вьетнамским клещом этого не делали, так как он у нас был один, и приоритетной задачей было определение его видовой принадлежности. Это был первый шаг в изучении эктопаразитофауны летучих мышей Вьетнама, следующим уже может стать изучение инфекционных агентов (бактерий, вирусов, простейших).

Биологи ТГУ постоянно изучают что-то, связанное с клещами. Как это помогает решать проблему с ними на нашей территории?

Тут нужно понимать, что не все клещи – враги человечества. Паразитических клещей, являющихся угрозой для нас, намного меньше тех видов, которые приносят пользу. Например, почвенные клещи – один из важнейших компонентов экосистемы. И если мы устроим глобальную борьбу с клещами, мы уничтожим и их. Именно поэтому и нужно до деталей изучать эктопаразитов, чтобы бороться с ними точечно.

Самым эффективным способом борьбы с клещами было и остаётся опрыскивание акарицидами. Однако здесь присутствует эффект «борьбы брони и снаряда»: человек разрабатывает новые акарициды, а клещи отлично к ним приспосабливаются. Но чем больше мы знаем об этих паразитах, тем эффективнее будут новые системы опрыскивания. 

Вообще, бороться с группой кого-либо, значительно превосходящей по численности, – занятие вполне бесполезное.  Необходимо не уничтожать клещей, а учиться с ними сосуществовать. Это – единственное, что может сделать человек.  Клещи – альтернативно высокоразвитые существа, они жили задолго до человека и явно его переживут, тут можно даже не сомневаться. Другой вопрос, что чем больше мы о них знаем, тем нам же проще искать пути сосуществования с ними.


Редакция блога

˃˃ следующий выпуск блога

˂˂ предыдущий выпуск блога

Эктопаразиты у КРС — симптомы, диагностика и лечение

Своевременная обработка от эктопаразитов (поражающих кожу — оводов, мух, комаров, вшей, клещей) защитит ваше поголовье от тяжелых инфекций, снизит расходы на лечение вызванных ими заболеваний, сохранит в норме здоровье и продуктивность животных. Рекомендуем обрабатывать как особей, так и помещение, где их содержат, чтобы предотвратить повторное заражение.

Почему важно проводить обработку от эктопаразитов

Насекомые, накожные и подкожные паразиты — причина множества тяжелых болезней КРС:

•   бовиколеза;

•   псороптоза;

•   хориоптоза;

•   демодекоза;

•   гиподерматоза;

•   бабезиоза;

•   бруцеллеза;

•   анаплазмоза и др.

Животные заражаются на пастбищах, через подстилку, при контактах друг с другом. В помещениях паразиты обсеменяют корм, молоко. Возможно заражение человека.

Наибольшему риску поголовье подвергается в пастбищный период, который совпадает с периодом активности большинства эктопаразитов. На пастбищах на животных может напасть рой насекомых, поэтому возможно массовое заражение стада. Одни лишь мухи переносят сотни патогенных организмов, личинки гельминтов, заражение которыми может привести к ощутимым экономическим потерям.

В чем опасность для поголовья

•   Продуктивность коров при лактации может снижаться на 30–50%.

•   Из-за постоянного кожного зуда, раздражения нарушаются режимы сна, отдыха и кормления.

•    Ослабевает иммунитет.

•    Возникают воспаления кожных покровов.

•    Инфицирование патогенными микроорганизмами приводит к поражению внутренних органов и систем.

Признаки поражения КРС эктопаразитами

•   Сильный зуд особенно в области вымени у коров, паха у быков, задних конечностей, корня хвоста, шеи, подгрудка.

•    Животные постоянно раздражены, особенно ночью.

•    На коже заметны участки выпадения шерсти, волдыри, язвочки, ранки, которые кровоточат.

•    Затем появляются твердые корки, узелки.

•     Нередки признаки интоксикации и различные осложнения.

Чем проводить обработку против эктопаразитов

Обработка поголовья

Животных, которые находятся на свободном выпасе, обрабатывают в первые теплые дни, когда начинается лет насекомых. Эффективное и недорогое средство для этих целей разработала отечественная компания NITA-FARM.

Цифлунит. Действующее вещество цифлутрин надежно защищает животных до 6 недель (рекомендуем повторять обработку каждые 4–6 недель). При этом продукцию можно использовать без ограничений. Препарат выпускается с дозатором, с помощью которого удобно наносить средство вдоль позвоночника. На одну особь достаточно 10 мл. Цифлунит хорошо распределяется по коже и губительно воздействует на большинство видов насекомых, представляющих опасность для КРС в регионах России.

Обработка помещений

Чтобы исключить заражение предметов, подстилки в местах содержания животных, следует проводить их профилактическую обработку против эктопаразитов. Компания NITA-FARM предлагает средство профессионального уровня для дезинсекции помещений и прилегающей территории Цифлунит-ON. Оно удобно и экономично в применении, уничтожает членистоногих паразитов на любой стадии развития. Средство эффективно против тараканов, клопов, клещей, мух, блох, муравьев, жука-чернотелки и сверчков.

Действующее вещество —также цифлутрин. Цифлунит-ON разводят в пропорции, указанной в инструкции (зависит от вида паразитов), и обрабатывают помещение с помощью опрыскивающего, распыляющего оборудования. После применения средство до 3 месяцев в неизменном виде сохраняется на поверхности предметов, не оказывая на них разрушительного действия.

Бетховен – ветеринарная клиника, Красноярск

 Блоха — это бескрылое насекомое, с уплощенным по бокам телом. Ctenocephalides canis и Ctenocephalides felis — разновидности блох, которые обычно обитают на собаках и кошках. Они обычно встречаются в местах обитания собак: предполагается, что только 10% из имеющихся в окружающей среде блох находятся в шерсти собаки. Наличие блох можно обнаружить по экскрементам в виде мелких черных крошек на теле животного в области спины и поясницы. Это остатки переваренной в организме блохи крови. Блохи вызывают многие заболевания у собак и кошек. Во-первых, они сами являются патогенным агентом для животного, в основном вызывающим зуд и алопеции (залысины). Большое количество блох может привести к серьёзной анемии. У животных может развиваться гиперчувствительность к слюне блох, даже если их число незначительно, и визуально их не видно. Эта реакция проявляется наличием ран и алопеций от расчесов, обычно локализующихся в области поясницы и задней части тела животного.

  Отодектоз , или ушная чесотка, вызывающаяся саркоптоидным клещом Otodectes cynotis. Возбудитель — О. cynotis. Первые три пары конечностей хорошо развиты, четвертая пара у самок рудиментарна. Присоски у самок расположены на первой и второй парах конечностей, у самцов — на всех четырех. Цикл развития: яйцо, личинка, протонимфа, телеонимфа, взрослые клещи. При благоприятных условиях весь цикл развития завершается за 18—25 дней. Распространение повсеместное, чаще поражаются животные в возрасте от 1,5 до 12 месяцев. Возбудители заболевания живут в наружном слуховом проходе и питаются остатками кожи (эпидермисом). Клещи слущивают верхний слой эпидермиса, и из поврежденных участков кожи выделяется тканевая жидкость, которая, подсыхая, образует струпья и корочки. Характерный признак — интенсивный зуд (животное яростно чешет уши и трясет головой). Выделения из уха тёмно-коричневые, как кофейная гуща, и с неприятным запахом. Постоянно наносимые расчесы приводят к выпадению волос, появлению струпа и залысин. Часто присоединяется секундарная бактериальная инфекция. При внедрении в места поражения секундарной микрофлоры развивается воспалительный процесс, иногда наступает прободение барабанной перепонки и переход воспаления на среднее и внутреннее ухо. Передача происходит при прямом контакте с зараженным животным.

  Хейлетиеллез — (блуждающая» чесотка) вызывается клещами рода Cheyletiella. Это мелкие клещи овальной формы. Гнатосома у них четко обособлена от тела, имеет вид конуса и плотные покровы. По бокам от нее располагаются крупные щупальца (пальпы) с 5 подвижно соединенными члениками, заканчивающимися когтевидными выростами. Две пары передних конечностей несколько удалены от двух пар задних. Лапки 1 пары ног не имеют коготков. На спинной стороне тела у самок один, а у самцов два гладких трапециевидных щита. Они слабо хитинизированы, желтовато-белого цвета. Краевые щетинки покрыты волосками. У самца половое отверстие расположено в задней половине на спинной стороне тела, а у самки открывается крупной продольной щелью на брюшной стороне. Цикл развития включает стадии яйца, личинки, протонимфы, телеонимфы, взрослая особь. Передача происходит при прямом контакте или другим механическим способом. На пораженных участках выявляются корки и чешуйки. Животные часто расчесывают эти места. С помощью скальпеля с них делаются поверхностные соскобы; их помещают на предметное стекло в каплю вазелинового масла и проводят микроскопическое исследование.

  Демодекоз — инвазионное заболевание животных, сопровождающееся генерализованным или местным поражением кожи. Вызывается клещами рода Demodex, паразитирующими в кожных фолликулах. Клещи являются нормальными обитателями кожи, однако при снижении кожного иммунитета начинают активно размножаться и приводят к заболеванию. У собак обитает Demodex canis, у кошек обнаруживают Demodex cati и Demodex gatoi. Последний передаётся от кошки к кошке при прямом контакте.

Червеобразная форма тела резко отличает демодекса от других клещей. Клещ мелкого размера. В головной части тела клеща локализуются ротовые органы, состоящие из парных пальп и хелицер и непарного гипостома. Паразит имеет 4 пары очень коротких трехчленистых ног с двумя хитинизированными коготками на пальцах, на которых нет присосок. Задняя удлиненная часть тела клеща закруглена, на конце имеет цилиндрическую форму с поперечной мелкой исчерченностью кутикулы. Яйцо лимонообразной формы. При благоприятных условиях на превращение яйца в половозрелого паразита требуется около трех недель, в теплый период – 14 – 15 дней. За это время клещ проходит пять фаз развития: Яйцо, личинка, нимфа, имаго. Способностью добывать пищу обладает только имаго, которые обеспечиваю ею и потомство. Личинка и нимфа использует запасы жидкой пищи, добытые взрослым паразитом и непосредственно в очаге поражения. Демодекозом часто болеют молодые животные в возрасте до года.

Демодекоз обычно нетрудно диагностировать, если произвести серию глубоких кожных соскобов. Чтобы повысить шанс постановки окончательного диагноза, кожа должна быть сдавлена непосредственно до проведения кожного соскоба, чтобы выгнать клещей из волосяного фолликула. Затем должен быть проведен соскоб кожи до тех пор, пока не будет отмечено некоторое просачивание крови (капиллярное кровотечение), чтобы убедиться, что кожа соскоблена достаточно глубоко. Если поражение единично, часто параллельно делают соскобы с других (внешне непоражённых мест), чтобы определить форму демодекоза: локализованная или генерализованная. В соскобе определяют количество взрослых особей в поле зрения, процент живых особей, наличие яиц и личинок. Лечение отменяют только после получения двух отрицательных соскобов, взятых с интервалом в один месяц. В другом случае вероятен рецидив заболевания.

  Саркоптоз (Sarcoptoses) —  зудневая чесотка — инвазионная болезнь животных, вызываемая зудневыми клещами рода Sarcoptes и характеризующаяся кожным зудом и дерматитом. Возбудитель саркоптоза – Sarcoptes scabiei. Тело зудневых клещей округлое. Хоботок подковообразный, челюсти грызущего типа, ноги короткие со стерженьковой присоской на конце. Зудневые клещи — кожные эндопаразиты, развиваются и размножаются в толще эпидермиса.

Источник возбудителя инвазии — больные саркоптозом животные. Заражение происходит при совместном содержании больных животных со здоровыми, а также через инвазированные предметы ухода. Более восприимчивы к саркоптозу молодые и истощённые животные. На теле хозяина клещи живут 4-6 недель, вне его организма — 3-4 недели. Вначале поражается кожа без шерстного покрова: головы, локтей, затем других участков тела хозяина. Появляются расчёсы, бесшёрстные места, ссадины, корочки, кожа утолщается, теряется её эластичность

  Нотоэдроз — заболевание, проявляющееся воспалением кожи в области головы, расчесами, зудом, выпадением волос. Возбудитель — саркоптоидный клещ Notoedres cati. Тело почти прозрачное, шаровидной формы. У самцов на четвертой паре ног колоколовидные присоски на нечленистых стерженьках (амбулакры). У самок третья и четвертая пары ног колоколовидных присосок не имеют. Наиболее важным признаком, отличающим этих клещей от рода Sarcoptes, является смещенное на спинную сторону анальное отверстие. Зудни паразитируют и размножаются в ходах, которые прогрызают в глубоких частях рогового слоя кожи, непосредственно граничащих с мальпигиевым слоем. Здесь самки откладывают в сутки от 2 до 8 яиц, в течение 6—8 недель жизни одна самка способна отложить от 20 до 50 яиц. Из яиц выходят личинки, которые после линьки превращаются в протонимфы, а после второй линьки становятся телеонимфами. Женские телеонимфы выползают на поверхность кожи для копуляции с самцами. Сперматозоиды самца находятся в семяприемнике телеонимфы до превращения ее в половозрелую самку. После копуляции телеонимфы прогрызают самостоятельный ход в эпидермисе, линяют и становятся самками. Только после этого происходит внутреннее самооплодотворение и новая самка начинает откладывать яйца. Самцы после копуляции или погибают, или проделывают новый ход. Зудни полностью завершают развитие при оптимальных условиях за 15—19 дней. Передача возбудителя происходит как при непосредственном контакте с зараженным организмом, так и через различные предметы ухода. Сначала поражается область головы и шеи.

  Псороптоз — заболевание, вызываемое клещами из рода Psoroptes и характеризующееся поражением внутренней поверхности ушной раковины, реже других частей тела с образованием корок. Возбудитель — клещ Psoroptes spp., овальной формы, темно-желтого или желтоватого цвета. У взрослых особей четыре пары ног. К псороптозу восприимчивы взрослые кролики, которые заражаются при контакте с больными животными, через перхоть и чешуйки, выпадающие из ушных раковин вместе с клещами. Являются высококонтагиозными. Также кролики заражаются при непосредственном контакте больных со здоровыми, через предметы ухода, инвентарь, подстилку, при пересадке в клетки, где находились больные животные. Возможно заражение молодняка от своих матерей, у которых заболевание может протекать бессимптомно.

Поражённые кролики становятся беспокойными, трут уши, прикасаются ими к клетке, трясут головой. При лёгкой форме псороптоза воспалительный процесс носит очаговый характер и развивается по типу мокнущей экземы: вначале появляются красные бугорки, затем пузырьки, которые через 1—2 дня лопаются, из них вытекает светло-желтая жидкость, она подсыхает, и образуются корочки. В наружном слуховом проходе увеличивается содержание серы в виде буровато-желтых комочков. Заболевание может осложняться вторичной (секундарной) микрофлорой, вследствие чего воспалительный процесс переходит на оболочки головного мозга: у животных появляются признаки поражения центральной нервной системы. У некоторых животных отмечается бессимптомная форма псороптоза, которая характеризуется только легким периодическим зудом. Для диагностики берут поверхностные соскобы на периферии кожных поражений.

  Кнемидокоптоз (известковая нога, чесотка лап, тельная чесотка) попугаев и других птиц. Болеют многие домашние и декоративные птицы: куры, индейки, гуси, фазаны, перепела, попугаи, воробьиные. Возбудители – клещи рода Knemidocoptes. Мелкие клещи желтого цвета, с округлым тельцем и короткими лапками с подковообразным хоботком. Самка клеща производит личинки, из которых вырастают первые нимфы, из них вторые нимфы, затем происходит превращение во взрослых особей — самцов и самок. Клещи живут в подчешуйках цевки, в перьевых сумках, в слое эпидермиса птиц около восковицы и клюва, в плотных наружных складках кожи, где питаются лимфой и кровью.

Передача происходит при прямом контакте с инфицированной птицей. Поражаются участки тела, не имеющие перьев (лапы, клюв). Кнемидокоптоз характеризуется зудом, явлениями дерматита, некрозом пальцев, реже — клюва. У волнистых попугайчиков сначала образуется серо-белый налет на цевках, на лапах и в уголках клюва. Далее, в течение нескольких дней, налет увеличивается в объеме. В результате усиления регенерирующих свойств кожи эпидермис интенсивно разрастается. Образуются деформированные наросты от 1-2 мм до 8-10 мм на восковице, на голове (с заходом на оперение), в контактных зонах оперенных и роговых покровов лап. В этих местах также выпадает оперение. У стержней перьев возникают корочки. Птица часто трогает клювом места, вызывающие зуд, расчесывает кожу, вплоть до появления крови. Она может начать вырывать здесь и перья. В коже клещи образуют узелки, размером с булавочную головку и содержащие множество молодых паразитов. Взрослые клещи в слое кожи пробуравливают ходы. Пораженные этими ходами участки в области клюва выглядят, как губка. Для диагностики берут соскобы на границе поражения и здоровой кожи, затем исследуют под микроскопом.

Обработка от эктопаразитов (блохи, клещи и т.д.) Новости

Haemobartonella felis (возбудитель гемобартенеллеза) и других кровепаразитов.

Клинические признаки

Заражение блохами протекает с различными клиническими признаками, от субклинического течения до тяжелых дерматитов. Спектр заболеваний отражает степень заражения блохами и состояние иммунной системы хозяина.

Классическими признаками является зуд, от умеренного до сильного, алопеции и ссадины на коже в результате расчесывания. У собак также возможны гиперпигментация, шелушение, пиодерма и другие вторичные изменения. У кошек встречается милиарный дерматит, симметричные алопеции (из-за расчесывания) и эозинофильные поражения кожи.

Дифференциальный диагноз: гиперчувствительность (атопия, пищевая, контактная, насекомые, не относящиеся к блохам). Другие эктопаразиты (клещи, вши). Пиодерма и/или дерматиты, вызванные Malassezia – нужно принимать во внимание у собак, хотя обычно они являются вторичными осложнениями других заболеваний. Дерматофитозы (у кошек)

Профилактика и лечение
Блохи чувствительны к разнообразным эктопаразитоцидам (в России с успехом применяются аэрозоль и капли на холку, » Адвантейдж «, » Адвантикс «, ошейники «Килтикс», капли «Барс» и другие). Одновременно с уничтожением паразитов на животных необходимо бороться с насекомыми в окружающей среде. Обрабатывать нужно всех животных в доме. Рекомендуются регулярные профилактические обработки. Борьба с блохами в окружающей среде включает регулярное мытье лежанок для животных, очистку пылесосом.

Регулярно обрабатывайте животных от эктопаразитов!

Комплекс эктопаразитов восточноевропейской полевки Microtus rossiaemeridionalis (Arvicolinae, Rodentia) на северной границе ареала в Западной Сибири

30

Russian Journal of Parasitology / Российский паразитологический журнал

43. Сапегина В. Ф. Равкин Ю. С. Лукьянова И. В., Се-

белева Г. Г. Блохи лесной зоны Западной Сибири

// Проблемы зоогеографии и истории фауны.

Новосибирск: Наука, 1980. С. 94–116.

44. Сарапульцева Е. С., Стариков В. П., Берников

К. А. Мелкие млекопитающие и их роль в про-

кормлении иксодовых клещей Среднего При-

обья // Экология и эволюция: матер. Между-

нар. симпозиума, посвящ. 100-летию академика

С. С. Шварца (1-5 апреля 2019, г. Екатеринбург).

Екатеринбург: Гуманитарный университет,

2019. С. 601–604.

45. Сибиряков П. А., Стариков В. П., Петухов В. А.,

Русаков В. А., Наконечный Н. В., Дупал Т. А., По-

лявина О. В., Ялковская Л. Э., Маркова Е. А. Мо-

лекулярно-генетические данные о распростра-

нении видов-двойников Microtus arvalis (форма

obscurus) и Microtus rossiaemeridionalis на тер-

ритории Уральского региона и Западной Сиби-

ри // Экология и эволюция: новые горизонты:

матер. Междунар. симпозиума, посвященного

100-летию академика С. С. Шварца (1-5 апреля,

2019, г. Екатеринбург). Екатеринбург: Гумани-

тарный университет, 2019. С. 340–341.

46. Стариков В. П. Пространственная структура на-

селения мелких млекопитающих. Лесостепная

и лесная зоны Западной Сибири // Простран-

ственно-временная динамика животного населе-

ния. Новосибирск: Наука, 1985. С. 176–187.

47. Стариков В. П., Сапегина В. Ф. Эктопаразиты

мелких млекопитающих лесостепного Зауралья

// Известия Сибирского отделения Академии

наук СССР. Новосибирск: Наука, 1986. С. 76–83.

48. Стариков В. П., Зарубина B. H., Вершинин Е.

А. К фауне вшей (Anoplura) грызунов Южного

Зауралья // Вопросы динамики популяций мле-

копитающих: информ. матер. Свердловск: УрО

АН СССР, 1988. С. 58–59.

49. Стариков В. П., Морозкина А. В. «Обыкновен-

ная» полевка на севере Западной Сибири: в

отрыве от основной части ареала // Человек и

Север: Антропология, археология, экология:

Матер. Всерос. конф., 26-30 марта 2012 г. Тю-

мень: Изд-во ИПОС СО РАН, 2012. С. 412–414.

50. Стариков В. П., Петухов В. А., Винарская Н. П.,

Морозкина А. В. Восточноевропейская полевка

(Microtus rossiaemeridionalis) города Сургута

// Вестник Нижневартовского гос. ун-та. 2016.

№ 2. С. 50–55.

51. Стариков В. П., Винарская Н. П., Бородин A. B.,

Берников К. А. Комплексная оценка природного

очага туляремии в слиянии рек Оби и Иртыша

// Проблемы особо опасных инфекций. 2017.

№ 2. С. 28–31.

52. Стариков В. П., Майорова А. Д., Сарапульцева Е.

С., Берников К. А., Наконечный Н. В., Морозкина

А. В., Бородин А. В., Петухов В. А. Материалы

по иксодовым клещам (Ixodidae) мелких мле-

копитающих Ханты-Мансийского автономного

округа – Югры // Самарский научный вестник.

2017. Т. 6, № 2. С. 88–91.

53. Стариков В. П., Вершинин Е. А., Кравченко В.

Н., Бородин А. В., Петухов В. А., Берников К. А.

Вши (Anoplura) мелких млекопитающих Сред-

него Приобья // Паразитология. 2019. Т. 53, № 5.

С. 369–377.

54. Филиппова Н. А. (под ред.) Таежный клещ Ixodes

persulcatus Schulze (Acarina, Ixodidae): Морфо-

логия, систематика, экология, медицинское зна-

чение. Л.: Наука, 1985. 416 c.

55. Durden L. A., Musser G. G. e sucking lice (Insecta,

Anoplura) of the world: a taxonomic checklist with

records of mammalian hosts and geographical

distributions. Bulletin of the American Museum of

Natural History. 1994; 218: 90.

56. Markova E. A., Starikov V. P., Yalkovskaya L. Е.,

Zykov S. V., Morozkina A. V., Sibiryakov P. A.

Molecular and cytogenetic evidence for the

occurrence of the East European vole Microtus

rossiaemeridionalis (Arvicolinae, Rodentia) in the

north of West Siberia. Doklady Biological Sciences,

2014; 455 (1): 129–131.

57. Nekrutenko A., Makova K. D., Chesser R. K.,

Baker R. J. Representational dierence analysis to

distinguish cryptic species. Molecular Ecology,

1999; 7: 1235–1238.

58. Vinarski M. V., Korallo-Vinarskaya N. P. An

annotated catalogue of the gamasid mites associated

with small mammals in Asiatic Russia. e family

Laelapidae 5. str. (Acari: Mesostigmata: Vamasina).

Zootaxa, 2016; 4111 (3): 223–245.

59. Vinarski M. V., Korallo-Vinarskaya N. P. An

annotated catalogue of the gamasid mites

associated with small mammals in Asiatic Russia.

e family Haemogamasidae (Acari: Mesostigmata:

Vamasina). Zootaxa, 2017; 4273 (1): 001–018.

References

1. Beklemishev V. N. Terminology and concepts

necessary for the quantitative study of populations of

ectoparasites and nidicols. Zoologicheskiy zhurnal =

Journal of zoology. 1961; 40 (2): 149-158. (In Russ.)

2. Fleas (Siphonaptera) [Electronic resource]. Access

mode: https://www.zin.ru/Animalia/Siphonaptera/

index_r.htm. – Title from the screen (date of access:

30/08/2018).

3. Bogdanov I. I. Ecological and faunal complexes

of ticks (Parasitiformes) and eas (Siphonaptera)

associated with small mammals and their nests in

the Western Siberian Lowland. Prirodno-ochagovyye

bolezni cheloveka = Natural focal human diseases.

Omsk, 1985; 87-94. (In Russ.)

ФАУНА, МОРФОЛОГИЯ И СИСТЕМАТИКА ПАРАЗИТОВ

Эктопаразиты

Эктопаразиты — это наружные паразиты, обитающие на поверхности тела хозяина (клещи, пиявки, блохи). У растений-эктопаразитов большая часть тела находится вне хозяина, а в него внедряются и вступают в контакт с живыми клетками лишь органы чужеядного питания — присоски или гаустории (повилика европейская — Cuscuta europaea и др.).[ …]

Эктопаразиты — питаются телом хозяина, находясь на его поверхности: паразиты-животные (блохи, вши, клещи, черви-сосалыцики и др.) и растения (тля, мучнистая роса, раффлезия). У последних, как правило, имеются специальные приспособления, позволяющие им селиться на поверхности листьев, проникая своими органами глубоко в тело растения-хозяина.[ …]

В группу эктопаразитов рыб входят многие простейшие (жгутиконосцы, инфузории), некоторые гельминты (моногенетические сосальщики), ракообразные, пиявки. На всех этапах жизненного цикла они находятся в тесном контакте не только с хозяином, но и с внешней средой, испытывая от них многофакторные воздействия.[ …]

Это эктопаразиты рыб, паразитирующие на жаберном аппарате. В естественных водоемах Сибири, Башкортостана и Южного Урала инвазия представлена достаточно широко, где заражаются в основном взрослые сиговые рыбы. При сильной инвазии рыб, особенно осложненной грибами, много продукции выбраковывают из-за потери товарного вида.[ …]

Некоторые из них (эктопаразиты) паразитируют на живущих в воде или почве амебах, проникая в них своими гаусториями; другие (эндопаразиты) активно захватывают нематод, личинок насекомых и т. п., пронизывая все тело жертвы мицелием.[ …]

Они в большинстве своем эктопаразиты холоднокровных животных: рыб, амфибий, рептилий и в виде исключения головоногих моллюсков, а также водных млекопитающих. Моногенеям свойственна ярко выраженная приуроченность к определенным хозяевам, т. е. специфичность. Величина их колеблется от 0,3 до 30 мм. Тело плоское, удлиненное, розовато- или красновато-коричневое. Прикрепительные органы у моногеней хорошо развиты и расположены на переднем и заднем концах тела. Моногеней имеют все четыре системы (нервную, пищеварительную, выделительную, половую), близкие по строению к таковым у трематод.[ …]

Некоторые рыбы объедают эктопаразитов, сидящих на коже других видов рыб. Так например, тихоокеанский губан Labroides phtirophagus Randall довольно часто объедает паразитов с кожи мурены Gymnothorax meleagris Shaw. Подобного рода отношения уже есть переход к симбиозу.[ …]

Одним из наиболее известных эктопаразитов, как уже было отмечено выше, является повилика европейская (Cuscuta europaea), паразитирующая на многих травянистых видах и невысоких кустарниках (рис. 5.91).[ …]

Паразитов обычно делят на две группы: эктопаразитов и эндопаразитов.[ …]

Часто вспышка хилодонеллеза заканчивается массовой гибелью рыб.[ …]

Клещи (Acariña) в подавляющем большинстве — эктопаразиты, живущие на теле насекомых, или все время, как, например, пузатый клещ (Pediculoides ven-tricosus Newp.), паразитирующий на самых различных насекомых, или только в стадии личинки, как, например, красный клещ (Acharolophus ingoíus Oudms.), паразитирующий на прусике (Calliptamus italicus L.) или другие клещи красотелки (Trombidiidae), поражающие многих насекомых. Известен среди клещей и внутренний паразит — Acarapis woodi Renn., проникающий в трахеи домашней пчелы (Apis mellifera L.) через дыхальца первого грудного сегмента.[ …]

Среди кишечнополостных имеется ряд эндо- и эктопаразитов, рыб. Из колониальных форм Hydrichthys 7î3pa-зитирует на рыбах Южной Африки.[ …]

Попова Г. А. Аммиачные ванны как метод борьбы с эктопаразитами мальков карпа. «Рыбная промышленность», сб. II, 1956.[ …]

Наибольшее применение для защиты растений и в борьбе с эктопаразитами домашних животных получили смешанные жирноароматические эфиры тиофосфорной кислоты178-179.[ …]

Слизь защищает кожу и жабры от вредного действия бактерий, грибов, эктопаразитов, препятствует проникновению в организм токсинов, участвует в свертывании крови. Защитные функции ее обеспечиваются за счет высокого содержания в ней муциноподобного вещества, гликопротеидов, нуклепротеидов, лизоцима и др. В ответ на действие вредных факторов среды рыба реагирует повышением выделения слизи. Однако в зависимости от вида факторов ее характер меняется. Так, в щелочной среде слизь обильна и разжижена. В кислой среде, а также при воздействии солей тяжелых металлов происходит ее коагуляция.[ …]

Паразиты, питающиеся за счет своего хозяина снаружи его тела, называются эктопаразитами, или наружными паразитами, таковы, например, кровососущие комары (Culicidae), постельный клоп (Cimex lectularius L.), блохи (Aphaniptera), вши (Parasita), личинки некоторых перепончатокрылых (особенно из семейств группы Chalcidodea и Braconidae) и некоторых двукрылых насекомых (Diptera).[ …]

ДДВФ широко используют в качестве инсектицида для борьбы с грызущими вредителями растений и эктопаразитами животных. Он так же, как и хлорофос, гидролизуется в воде, но с меньшей скоростью. Показано [27], что кинетика процесса гидролитического разложения ДДВФ в водных растворах описывается уравнением реакции 1 -го порядка, причем солевой состав воды и биофакторы ускоряют его распад. Так, константа скорости гидролиза в водопроводной воде при 20 °С составляет 4,1- 10”3 сут-1 (т/2 =16,8 сут). В дистиллированной воде при той же температуре 2,7 10”3 сут-1 (т/2 = 25,9сут).[ …]

ПАРАЗИТ — организм, питающийся другим организмом (хозяином), не убивая его немедленно, но часто причиняя вред. Выделяют эктопаразитов, поражающих поверхность тела хозяина, и эндопаразитов, живущих внутри него.[ …]

Животным свойственны разные способы самоочищения. Паразиты противопоставляют этому формирование адаптивной формы тела (уплощенной у эктопаразитов, округло-удлиненной у паразитических червей), твердых и упругих покровов (блохи, вши и др.), прочной кутикулы (черви) и т. п.[ …]

ПЕСТИЦИД— химическое соединение, используемое для защиты растений, с.-х. продуктов, древесины, изделий из шерсти, хлопка, кожи, для уничтожения эктопаразитов животных и для борьбы с переносчиками опасных заболеваний. Названия пестицидов, используемых для уничтожения отдельных систематических групп животных и растений, составлены из латинского названия этих групп с окончанием -цид (акарицид, альгицид, афицид, инсектцид, ихтиоцид и т. д.). Использование пестицидов неизбежно отрицательно влияет на экосистемы любого иерархического уровня и на здоровье человека. П. следует использовать строго по назначению, в минимально необходимом количестве и лишь там, где химические средства защиты пока нельзя заменить биологическими. Мировое производство П. около 2 млн. т.[ …]

ПЕСТИЦИД — химическое соединение, используемое для защиты растений, с.-х. продуктов, древесины, изделий из шерсти, хлопка, кожи, для уничтожения эктопаразитов животных и для борьбы с переносчиками опасных заболеваний.[ …]

При наружном осмотре обращают внимание на наличие кровоизлияний, язв, припухлостей, черных пятен на разных участках тела рыб, собирают всех видимых крупных эктопаразитов. Для обнаружения микроскопических организмов с поверхности тела, плавников соскабливают скальпелем слизь, помещают ее на предметное стекло, смешивают с несколькими каплями водопроводной воды и рассматривают при малом и среднем увеличениях микроскопа. В них находят жгутиконосцев, инфузорий, споровиков, моногеней.[ …]

Паразитов классифицируют на временных (комары, мухи-жигалки, блохи и др.) и постоянных (простейшие, гельминты и др.), на эндопаразитов (простейшие, гельминты) и эктопаразитов (вши, блохи и др.). Паразитизм имеет важное значение в сельском хозяйстве и медицине, так как многие паразиты являются возбудителями болезней животных и человека.[ …]

С одной стороны, существуют эктопаразиты;, которые питаются телом хозяина, находясь на его поверхности Примерами из числа паразитов животных могут служить бло хи, вши, клещи, моногенетические сосальщики и даже некбто1 рые грибы; среди паразитов растений можно назвать тлей й йа+ стоящую мучнистую росу, которые селятся на поверхности листьев, проникая в ткани хозяина своими стилетами (тли) или? гаусториями. Экзопаразиты, как и их хозяева, в некоторой степени испытывают влияние внешней среды; они слабо защищены от холода, высыхания и т. д. Паразиты некоторой промежуточной группы обитают в полостях тела хозяина, например глисты— в пищеварительном тракте, легких и евстахиевых трубах животных, мицелии грибов — в межклетниках растения. Такие паразиты могут вовсе не проникать в клетки хозяина, находясь в строгом смысле «вне» клеточного тела, но в создаваемой им среде. Наконец, многие паразиты проникают непосредственна в ткани и клетки хозяина. Микропаразиты часто бывают полностью внутриклеточными. Малярийный плазмодий и пироплазмы, вызывающие бабезиозы у домашних животных, живут в эритроцитах позвоночных, простейшие из рода ТЬеИепа — в лимфоцитах и эпителиальных клетках крупного рогатого скота, овец и коз, а также в клетках слюнных желез клещей, которые переносят заражения. Среди паразитов высших растений в клетках хозяина обычно растут и делятся вирусы, бактерии и примитивные грибы.[ …]

Они встречаются в сточных водах промышленных предприятий по производству пластмасс, красителей, смол и др. Формалин используют в ихтиопатологии для борьбы с эктопаразитами.[ …]

Содержание хлорорганических пестицидов в продуктах животного происхождения может быть связано и с обработкой ими убойного и молочного скота в целях борьбы с эктопаразитами.[ …]

Во время различных манипуляций с рыбой часто наблюдаются травмирование кожи, срыв чешуи и потеря слизи. В результате этого нарушается защитная функция кожи. Рыбы легко заражаются эктопаразитами и становятся малоустойчивыми к неблагоприятным условиям среды. Поэтому осторожное обращение с рыбой на всех этапах рыбоводного процесса является важной профилактической мерой в сохранении здоровья рыб.[ …]

Большую тревогу вызывает загрязнение почв России пестицидами, которые используются для борьбы с вредителями и болезнями растений, сорняками, вредителями хранящейся сельскохозяйственной продукции, с эктопаразитами у домашних животных, а также с переносчиками опасных заболеваний человека и животных. К пестицидам относятся также химические средства стимулирования и торможения роста растений, препараты для предуборочного удаления листьев и подсушивания растений. Пестициды — это единственный загрязнитель, который сознательно вносится человеком в окружающую среду. Все виды пестицидов (инсектициды и акарициды, гербициды, фунгициды, родентици-ды, ДДТ, ГХЦГ и др.) представляют собой яды и поражают не только животных-вредителей, растения (сорняки) и возбудителей болезней культурных растений, но и много других полезных животных и растений, а также представляют серьезную опасность для человека. Пестициды обладают способностью накапливаться в окружающей среде и организме животных и человека, передаваясь по пищевым цепочкам, нарушая обмен веществ, повреждая структуры клеток, в том числе аппарат наследственности.[ …]

Пестициды широко используют в сельском и лесном хозяйстве, для регулирования роста растений и защиты их от различных вредителей и болезней, удаления сорной растительности, сохранения запаса зерна, защиты животных от эктопаразитов, уничтожения переносчиков инфекционных заболеваний человека и животных, а также в ряде отраслей промышленности для борьбы с вредными организмами, нарушающими течение технологических процессов.[ …]

Большое число паразитов обитает не внутри, а на поверхности тела хозяина, выступающего в этом случае как часть внешней среды паразита, снабжая его пищей, предоставляя убежище, трансформируя микроклимат. Связь с хозяином эктопаразита может быть постоянной или временной. Одна из основных жизненно важных экологических задач для постоянных или длительно связанных с хозяином эктопаразитов — удержаться на теле хозяина. Типичные эктопаразиты в связи с этим обычно характеризуются наличием мощных органов прикрепления — присосок, крючьев, коготков и т. д., которые независимыми путями развиваются у самых разных по происхождению видов.[ …]

По данным ВНИОРХ, в условиях северных и северо-западных районов СССР.с целью общей дезинфекции следует вносить в зимовальные пруды 25—30 ц/га негашеной извести (июль — август), а при значительных отходах рыбы и ее зараженности эктопаразитами проводить известкование и весной после облова. Если эпизоотия выражена в сильной степени, известкование негашеной известью проводят двукратно. В случае спорозойных заболеваний (кокцидиоз2, миксоспоридиоз3), норму извести повышают до 40—45 ц/га.[ …]

Рыбы, сильно пораженные апиозомозом, малоподвижны, в слизи адсорбируется детрит. Они приобретают серовато-голубоватую или коричневатую окраску. При длительном течении болезни сеголетки карпа истощаются, часто поражаются другими эктопаразитами и погибают.[ …]

Биологические свойства. Обладает сильным инсектицидным действием против двукрылых насекомых и используется против мух, стойких к ДДТ, и тараканов, стойких к хлордану. Эффективен и против других насекомых и перспективен для борьбы с эктопаразитами домашних животных. Активность in vivo, по-видимому, объясняется разложением в дихлорфос (Metcalf R. L. et al., J. Econ.[ …]

Диагноз на бранхиомикоз ставят на основании эпизоотологических, клинических, патологоморфологических данных с обязательным обнаружением гриба в нативном материале или гистологических срезах. При этом следует исключить поражение жабр эктопаразитами, а также сангвиниколез и незаразный бран-хионекроз.[ …]

У пресноводных рыб В. А. Догель (1958 г.) в зависимости от возраста выделяет три группы паразитов: не зависящие от возраста, убывающие и возрастающие с увеличением возраста рыб. Например, для молоди прудовых рыб более опасны паразиты второй группы — в основном эктопаразиты, вызываемые большинством простейших, моногенетическими сосальщиками, аргулюсами и др. Если для карпов старшего возраста (товарной рыбы, ремонтных рыб и производителей) они практически неопасны и встречаются в виде паразитоносительства, то у мальков и сеголетков они могут вызывать их массовые заболевания и гибель.[ …]

Паразитизм: один из видов живет за счет другого, находясь внутри или на поверхности его тела. При этом организм-паразит использует живого хозяина не только как источник пищи, но и как место постоянного или временного обитания. Среди паразитов различают эндопаразитов и эктопаразитов. Эндопаразиты живут в теле хозяина и питаются его тканями или содержимым пищеварительного тракта (паразитические черви). Эктопаразиты обитают на коже хозяина и, обладая достаточной подвижностью, способны переходить от одного хозяина к другому (насекомые-кровососы).[ …]

В печени отмечают анемию или желтушное окрашивание. Микроскопически это проявляется в виде зернисто-вакуольной дистрофии гепатоцитов. В случаях осложнения болезни сапролегниозом и бактериальной инфекцией отмечают увеличение селезенки и почек. В жабрах выявляются гифы грибов, эктопаразиты и воспаление лепестков с инфильтрацией их лейкоцитами.[ …]

Распространение и экономический ущерб. Апиозомоз как самостоятельное заболевание молоди прудовых рыб регистрируют в последние десятилетия в различных рыбоводных хозяйствах России, применяющих уплотненные посадки рыб. При благоприятных условиях оно появляется самостоятельно или в виде смешанной инвазии с другими эктопаразитами и может вызывать частичную гибель рыб, за счет чего наносит определенный экономический ущерб.[ …]

В процессе эволюции паразиты максимально приспособились к своим хозяевам и условиям внешней среды. При этом средой первого порядка для них являются их хозяева и средой второго порядка — внешняя среда, окружающая хозяина вместе с паразитами. В соответствии с местом обитания в организме рыб их подразделяют на две категории: эктопаразиты и эндопаразиты. Эктопаразиты обитают на поверхности рыб (кожных покровах и жабрах), а эндопаразиты — во внутренних полостях, органах и тканях хозяина.[ …]

Формы паразитизма и связанные с этим взаимные адаптации паразитов и их хозяев чрезвычайно многообразны. Различают эктопаразитизм, при котором паразит обитает на хозяине и связан с его покровами (клещи, блохи, вши и др.), и эндопаразитизм (паразит живет внутри тела хозяина, например паразитические черви и простейшие). Среди паразитических растений эктопаразиты отличаются тем, что тело располагается вне организма хозяина, и лишь органы питания (гаустории) проникают в его ткани. Таковы, например, мучнисторосяные грибы; из высших растений —повилика. Эндопаразиты (главным образом грибы) погружены в ткани хозяина, снаружи находятся лишь органы размножения. Естественно, во всех случаях связь с хозяином сильнее у эндопаразитов, а взаимоотношения с внешней («первичной») средой сложнее у эктопаразитов.[ …]

Синтезирован и изучен ряд аналогов и гомологов хлорофоса243, эфиров хлорофоса244-246 и других производных. Он может быть использован в виде концентратов эмульсий для борьбы с вредителями растений и с эктопаразитами домашних животных.[ …]

Важной приспособительной особенностью паразитов является также специфичность поражения узкого или широкого круга хозяев. К узкоспецифичным относится большинство гельминтов, жизнедеятельность которых во многом зависит от биологической совместимости и биохимического родства с облигатным хозяином. Это позволяет им максимально использовать хозяина для роста, развития и выживания. Широкой специфичностью (поражением разных видов, родов и семейств рыб) обладают простейшие, особенно эктопаразиты. Она обеспечивает возможность приспосабливаться эктопаразитам к разным хозяевам и условиям внешней среды.[ …]

Установлено, что три рода нематод, способных передавать вирусы, относятся к отряду Dorylaimida. Из них два рода, Xiphinema и Longidorus, являются близкородственными и относятся к надсемейству Tylencholaiminae, семейству Dorylaimidae. Это крупные нематоды: взрослые особи достигают длины 3 мм и более. Третий род, в который входят переносчики вирусов,— Trichodorus—относится к семейству Trichodoridae. Представители этого рода мельче (длина взрослых особей около 1 мм). Все нематоды, относящиеся к этим трем родам, являются эктопаразитами и имеют довольно длинные стилеты. Они питаются на клетках эпидермиса корня (фото 84) и при питании делают проколы, обычно вблизи корневого чехлика.[ …]

Выше города по течению реки у рыб обнаружено 16 видов паразитов. Наиболее часто встречаются мета-церкарии трематод Diplostomum spathaceum, Opisthorchis felineus, Paracoenogonimus ovatus, Prochemistomum hughesi, Prochemistomum sp. и ракообразные Tracheliastes polycolpus. У рыб из p. Туры, отловленных в черте Тюмени, количество видов паразитов то же, но видовой состав отличается отсутствием ракообразных, цестод Triaenophorus nodulosus, Caryophyllaeus laticeps, ряда трематод и наличием цестод Caryophyllaeides fennica, трематод Cotylurus variegates, Allocreadium isoporum и нематод Raphidascaris acus. Ниже города по течению реки у рыб найдены только трематоды — 14 видов. Различия видового состава паразитов рыб в разных участках реки объясняются особенностями гидрологического режима и состава гидроценоза в каждом конкретном пункте. Выпадение из паразитофауны эктопаразитов Т. polycolpus и цестод Т. nodulosus, жизненный цикл которых связан с веслоногими раками, при протекании реки по городу может свидетельствовать о наличии в воде вредных примесей, к которым эти группы чувствительны.[ …]

Что такое эктопаразиты?

Эктопаразиты — это паразиты, которые прикрепляются к внешнему слою кожи своих хозяев. Там они питаются и процветают в течение всего жизненного цикла конкретного паразита. Они полностью зависят от питания хозяина, что может со временем серьезно ухудшить общее состояние здоровья хозяина. Существуют примеры этих типов паразитов, которые активно питаются людьми, а также различными видами животных.

Нередко эктопаразиты существуют в колониях. Эти колонии эффективно создают гнезда на внешнем слое кожи, создавая питательную среду, где паразиты могут размножаться. Когда это происходит, хозяин ослабевает с ускоренной скоростью, иногда вплоть до потери работоспособности. Без лечения существует вероятность смерти в какой-то момент.

Есть много разных эктопаразитов человека. Вши на теле и голове — два основных примера. Различные типы клещей также являются частью семейства эктопаразитов, в том числе носовые клещи. Животные могут испытывать этих нежелательных паразитов в виде гнездовых или перьевых клещей. И люди, и животные могут страдать от заражения эктопаразитами, в которое входят блохи или комары.

К счастью, существуют способы контроля над эктопаразитами. В качестве профилактических мер целесообразно окуривать внутренние пространства, как только обнаруживаются какие-либо признаки клещей, вшей и других форм эктопаразитов. Это верно, гнездятся ли паразиты в организме человека или животного. Устранение общей угрозы поможет минимизировать изменения паразитов, распространяющихся на других, живущих в домашнем хозяйстве.

В то же время, каждый человек в доме должен быть обработан, чтобы удалить любые возможные следы клещей или вшей от тела. Это включает в себя мытье специальными моющими средствами, которые предназначены для уничтожения паразитов и уничтожения их колоний. Многие формы эктопаразитов будут процветать в областях кожи, где присутствуют волосы на теле. Это означает, что человек должен использовать моющее средство с головы до ног, чтобы избавиться от вредителей. В зависимости от тяжести заражения может потребоваться пройти несколько процедур, прежде чем удаляются внешние паразиты.

Все виды паразитов, включая эктопаразитов, способны со временем наносить большой физический ущерб. В дополнение к истощению энергии хозяина, вредители могут также передавать бактерии и вирусы хозяину. В этом случае хозяин ослабевает быстрее, что делает необходимым устранение каких-либо телесных недугов, а также избавление от паразитов для восстановления здоровья.

ДРУГИЕ ЯЗЫКИ

Эктопаразиты медицинского и ветеринарного значения: лекарственная устойчивость и необходимость альтернативных методов борьбы | Журнал фармации и фармакологии

Аннотация

Цели

Несмотря на многочисленные попытки искоренения, многие эктопаразиты человека и домашнего скота остаются постоянной проблемой в современном мире. В течение многих лет ряд пестицидов, включая органофосфаты, органохлориды и синтетические пиретроиды, обеспечивал эффективную борьбу с этими паразитами; но интенсивное использование этих препаратов привело к развитию резистентности у многих целевых видов.Эта статья направлена ​​на обзор эффективности существующих методов контроля и обсуждение потенциальных альтернатив для долгосрочного устойчивого контроля над эктопаразитами.

Основные выводы

Важные медицинские эктопаразиты, такие как чесоточные клещи, головные вши и постельные клопы, представляют серьезную проблему для общественного здравоохранения, поэтому необходимы адекватные методы борьбы. Эктопаразиты домашнего скота и выращиваемой рыбы (например, клещи овечьей парши, клещи домашней птицы и морские вши) также вызывают озабоченность, учитывая растущую нагрузку на мировое снабжение продовольствием.Эти паразиты стали устойчивыми к нескольким классам пестицидов, что очень затрудняет борьбу с ними. В последнее время все больше исследований сосредоточено на альтернативных методах борьбы, таких как регуляторы роста насекомых, биологическая борьба с использованием эфирных масел или грибов, а также разработка вакцин против некоторых эктопаразитов, имеющих медицинское и ветеринарное значение.

Резюме

Лекарственная устойчивость распространена у всех эктопаразитов, обсуждаемых в этом обзоре. Было выявлено множество альтернативных методов борьбы, однако необходимы дальнейшие исследования, чтобы их можно было использовать для успешной борьбы с эктопаразитарными заболеваниями в будущем.

Введение

Членистоногие окружают нас повсюду. Тип членистоногих по количеству видов является крупнейшим типом животных на Земле, потенциально насчитывающим еще миллионы видов, которые еще не обнаружены. Со временем членистоногие эволюционировали вместе с людьми и другими позвоночными, и многие виды использовали их в своих собственных интересах в качестве паразитов. Паразит – это организм, который живет на или внутри другого организма (хозяина) и использует его для собственной выгоды.Виды членистоногих обычно живут на своем хозяине, что делает их эктопаразитами. Эктопаразиты могут паразитировать на самых разных организмах, от человека до насекомых и растений. Во многих случаях инвазия наносит небольшой ущерб хозяину и не требует лечения, но в других случаях членистоногие эктопаразиты могут вызывать серьезное заболевание либо непосредственно из-за физического повреждения, которое они вызывают, либо косвенно, перенося микроорганизмы или способствуя вторичной инфекции.

За последние 100 лет различные пестициды и инсектициды успешно применялись для борьбы с нашествием членистоногих вредителей.Однако, как и в случае с антибиотиками, чрезмерное использование этих препаратов привело к развитию резистентности у многих важных медицинских и ветеринарных паразитов. Фактически лекарственная устойчивость в настоящее время наблюдается более чем у 600 видов членистоногих вредителей. [1] Многие виды развили множественную лекарственную устойчивость, что делает их очень трудными для лечения. Здесь обсуждаются доступные в настоящее время методы борьбы с некоторыми наиболее экономически важными паразитическими членистоногими, которые легко заражают людей и домашний скот, а также перспективы новых методов борьбы, включая вакцинацию, с обновленной информацией о некоторых из самых последних разработок в этой области. .

Распространенные эктопаразиты человека

Заражение человека эктопаразитарными паразитами часто рассматривается как проблема «третьего мира». Это не так, поскольку вспышки заразных эктопаразитов, таких как постельные клопы, головные вши, лобковые вши, чесоточные клещи и другие, невероятно распространены в развитых странах. Эти заражения редко приводят к летальному исходу, но имеют изнурительные симптомы и часто сопровождаются социальным клеймом. Ответственных эктопаразитов может быть очень трудно уничтожить, и текущий контроль обычно основан на ряде химических обработок.Здесь мы обсуждаем доступные в настоящее время методы борьбы с некоторыми наиболее экономически важными паразитическими членистоногими, которые легко заражают людей, и проблемы, с которыми в настоящее время сталкиваются практикующие врачи.

Чесотка

Sarcoptes scabiei — крошечный эктопаразитический клещ длиной примерно 0,4 мм, вызывающий заболевание, известное как чесотка. [2] Чесотка очень распространена в развивающихся странах, где она является серьезной проблемой общественного здравоохранения. [3] Хотя это менее распространено в западных странах, циклические эпидемии обычны, особенно среди детей и в таких учреждениях, как дома престарелых. [4] Ежегодно во всем мире регистрируется более 300 миллионов случаев чесотки. [5] Чесоточные клещи наносят ущерб своему хозяину, проникая в роговой слой, создавая туннели, где они откладывают яйца и откладывают свои фекалии, вызывая сильный зуд и образование мелких пустул на поверхности кожи. [6] Развитие пустул обычно происходит через 3–4 недели после заражения из-за отсроченной реакции гиперчувствительности. [4] Возможно, что эта реакция вызвана аллергенами, выделяемыми с фекальными гранулами клещей, по механизму, сходному с механизмом, наблюдаемым при аллергии на клещей домашней пыли, благодаря идентификации гомологов аллергенов клещей домашней пыли в S. чесотка . [7] Вторичные инфекции, вызываемые бактериями, такими как Staphylococcus aureus , часто возникают в результате постоянного зуда, особенно в местах с плохой гигиеной. [6] В тяжелых случаях (часто называемых корковой чесоткой или норвежской чесоткой) миллионы клещей могут присутствовать на одном человеке, хотя более часты менее тяжелые инфекции, включающие около дюжины клещей. [3]

Sarcoptes scabiei передается от человека к человеку через кожный контакт, поэтому передача половым путем является обычным явлением. [3] Есть некоторые предположения, что клещи могут передаваться между хозяевами через зараженное белье, одежду или мебель из-за их способности выживать вне хозяина до 36 часов; [8] однако, другие обнаружили, что 15–20 минут прямого контакта с кожей необходимы для того, чтобы клещи переместились к новому хозяину. [4] В то время как профилактические меры, такие как соблюдение гигиены, могут быть использованы для предотвращения заражения, установленные случаи необходимо лечить акарицидными препаратами. Линдан (γ-гексахлорциклогексан) представляет собой хлорид органического вещества, который действует на управляемые γ-аминомасляной кислотой (ГАМК) хлоридные каналы членистоногих, приводя к параличу и, в конечном итоге, к смерти. [9] Препараты, содержащие линдан, успешно использовались для лечения чесотки до конца 1970-х годов, когда стали появляться сообщения о токсичности для человека. [10] Несмотря на это, препарат все же был разрешен к применению, но стали появляться доказательства резистентности к линдану. [11] К этому времени были найдены альтернативные методы лечения, такие как перметрин, синтетический пиретроид, а также бензилбензоат, органический эфир, токсичный для нервной системы членистоногих. [12] Бензилбензоат до сих пор используется для лечения чесотки в некоторых странах из-за его низкой стоимости; однако есть некоторые побочные эффекты, такие как раздражение кожи [3] , поэтому перметрин предпочтительнее, поскольку он безопаснее, а также более эффективен. [13] Перметрин очень успешно лечил чесотку в течение многих лет, [12] , пока в начале 2000-х годов не появились опасения по поводу устойчивости к этому препарату. [14,15] Ивермектин – макроциклический лактон, принадлежащий к семейству авермектинов [16] – также используется для лечения инвазий S. scabiei . [17] Ивермектин используется для лечения широкого спектра инфекций, включая многие нематодные паразиты человека и животных. Устойчивость к ивермектину распространена у желудочно-кишечных нематод домашнего скота, [18] , но еще не стала проблемой для чесотки.Учитывая модели развития резистентности к другим лицензированным препаратам для лечения чесотки и ситуацию с резистентностью желудочно-кишечных нематод, существует большая вероятность того, что это может произойти в ближайшем будущем, если ивермектин будет использоваться слишком интенсивно. Ясно, что для успешного лечения чесотки в будущем необходимо рассмотреть альтернативные медикаментозные методы лечения, а также альтернативные методы борьбы (например, биологический контроль).

Постельные клопы

Другим чрезвычайно распространенным эктопаразитом человека является постельный клоп.Известно, что постельные клопы сосуществуют с людьми на протяжении сотен лет, и есть доказательства их заражения еще в египетские времена. [19] Два вида постельных клопов, Cimex lectularius (умеренные регионы) и Cimex hemipterus (тропические регионы), заражают людей. [20] Около 20 лет назад успешное лечение постельных клопов в западном мире заставило многих поверить в то, что теперь они представляют собой проблему только в развивающихся странах, [21] , но с тех пор наблюдается возрождение проблема в развитых странах; например, количество зарегистрированных заражений в некоторых регионах Австралии увеличилось на 250% в период с 1997–2000 по 2001–2004 годы. [22] Считается, что это связано с увеличением количества международных поездок и повышенной устойчивостью C. lectularius к пестицидам. Постельные клопы — мелкие (длиной 2–5 мм), бескрылые, плоские насекомые, питающиеся кровью хозяина в ночное время, когда они неактивны. [23] В течение дня клопы прячутся в местах, близких к спальным помещениям своего хозяина, например, в деревянных перекладинах каркасов кроватей, швах матрасов и мебели для спален, и их очень трудно обнаружить. [23] Многие люди со временем становятся все более чувствительными к укусам, что может привести к образованию больших пустул. [24] Инвазии обычно не приводят к серьезным физическим повреждениям, но больные лица, как правило, испытывают сильный зуд в ночное время и часто имеют проблемы со сном. Существует также социальная стигма, связанная с заражением постельными клопами, и известно, что клопы переносят 28 различных патогенов человека; [23] однако; не было доказанных случаев, когда постельные клопы действительно передавали их и вызывали инфекцию. [25] Из-за сложности обнаружения жуков и проблем, связанных с неправильным соблюдением протоколов представителями общественности, обычно рекомендуется, чтобы лечение инвазий выполнялось профессионалами. [26]

Существует целый ряд инсектицидов для борьбы с заражением постельными клопами. Было показано, что синтетические пиретроиды обладают высокой эффективностью против Cimex spp., [27] , но устойчивость C. lectularius к ним начала проявляться во всем мире; в том числе в Великобритании, [28] , в США [29] и в Африке. [30] В ответ на появление устойчивости к пиретроидам многие средства борьбы с вредителями начали использовать комбинированные средства для борьбы с инвазиями, которые состоят из пиретроидного компонента и неоникотиноидного компонента; [31] однако уже есть доказательства появления резистентности к этим соединениям. [32,33] Другие альтернативные методы химической обработки включают органофосфаты и карбаматы, хотя устойчивость к ним также развилась. [28,34] Поскольку у этих насекомых быстро развивается устойчивость к большинству доступных лекарств, становится ясно, что необходимо либо найти альтернативные мишени для лекарств, либо разработать альтернативные методы контроля.

Головные вши

Из тысяч видов вшей (Заказ: Anoplura ) в мире есть три, которые питаются человеческой кровью. Это Pediculus humanus humanus (платяные вши), Pediculus humanus capitis (головные вши) и Phthirus pubis (лобковые вши). [34] Головная вошь, P. humanus capitis , считается самым распространенным эктопаразитом человека в мире. [35] Вши — это мелкие кровососущие бескрылые насекомые [36] , которым требуется несколько кровососущих промежутков между каждой линькой. [6] Хотя симптомы заражения головными вшами обычно нетяжелые, они могут вызывать потерю сна из-за зуда, а также вторичные бактериальные инфекции. [37] Инвазии часто подвергаются социальной стигматизации, а свободное от учебы/работы время может быть серьезным экономическим ущербом от инфекции. Передача обычно происходит при прямом контакте с зараженным человеком, хотя профилактические меры, такие как стирка белья, чистка пылесосом и отказ от совместного использования щеток/расчесок, также могут помочь ограничить передачу, [37] , особенно с учетом того, что вши способны выживать вне хозяина до 26 часов до голодания и/или высыхания. [6] Для лечения заражения вшами используются составы, содержащие активные пестициды, хотя это очень дорого, так как во многих случаях требуется более одной обработки для уничтожения всех стадий жизненного цикла (включая яйца). [37] Кроме того, представители общественности не всегда правильно следуют протоколам лечения, что приводит к повторному лечению и увеличению стоимости. [35] Приблизительно 240 миллионов долларов в год тратится на лечение в США от 6 до 12 миллионов случаев. [38]

Некоторые из наиболее распространенных инсектицидов для лечения головных вшей включают перметрин, фенотрин (еще один синтетический пиретроид), малатион (фосфаторганическое соединение) и линдан. [35] У головных вшей развилась резистентность к большинству из них по схеме, аналогичной наблюдаемой у S. scabiei . До появления синтетических пиретроидов в 1970-х годах линдан был основным продуктом, используемым для борьбы с заражением P. humanus capitis . [39] Однако, как и в случае лечения линданом чесотки, у головных вшей начала развиваться резистентность, и сообщалось о проблемах с токсичностью. [10,39] Линдан больше не рекомендуется для использования в Великобритании или США [35] из-за сниженной эффективности и потенциальных неблагоприятных побочных эффектов. [40] Было обнаружено, что малатион эффективен при лечении заражения вшами, [41] , но он был снят с продажи в США в период с 1990 по 1999 год из-за опасений по поводу воспламеняемости и проблем с применением. [35] Он был повторно введен из-за развития устойчивости к некоторым другим доступным методам лечения. Однако устойчивость развилась и к самому малатиону. В 1999 году Даунс и др. . сообщили о резистентности как к малатиону, так и к перметрину в популяциях вшей в Великобритании. Устойчивость к малатиону наблюдалась также во Франции, [42] Австралии, [43] США [44] и Дании. [45]

Синтетические пиретроиды, такие как перметрин и фенотрин, также используются для лечения головных педикулезов, при этом перметрин впервые начали применять в США в 1986 году. [6] Резистентность к этим препаратам также быстро росла, при этом резистентность впервые была зарегистрирована во Франции в 1994 г., [46] и вскоре после этого в Великобритании [47] и Чешской Республике. [48] Поскольку в настоящее время в популяциях вшей наблюдается резистентность к пиретроидам, линдану и малатиону, в последнее время появился интерес к использованию ивермектина для лечения инвазий головных вшей, который, как было показано, эффективен для уничтожения вшей. [49] Существует риск того, что P.humanus capitis в конечном итоге разовьет устойчивость к ивермектину, как и другие устойчивые виды.

Обычные эктопаразиты домашнего скота

От заражения членистоногими паразитами страдают не только люди. Домашние животные, такие как кошки и собаки, часто страдают от блох и клещей; и важные виды домашнего скота, такие как овцы и крупный рогатый скот, а также выращиваемая рыба также могут страдать от заражения членистоногими. Это является серьезной проблемой в связи с текущей глобальной ситуацией с доступностью продовольствия.Поскольку источники пищи быстро истощаются, а население растет, безопасность этих источников пищи очень важна. Паразитарные инвазии скота и рыбы могут привести к значительным потерям, а стоимость их лечения увеличивает стоимость конечного продукта, поэтому крайне важно, чтобы они контролировались дешево, но эффективно. Ниже приведены лишь некоторые примеры видов членистоногих, паразитирующих на домашнем скоте, которые также становятся все более устойчивыми к имеющимся лекарственным препаратам.

Парша овец

Парша овец представляет собой заболевание, имеющее большое экономическое значение в Соединенном Королевстве и встречается в овцеводческих странах по всему миру, за исключением Австралии и Новой Зеландии, где она была успешно искоренена. [50] Вызывается Psoroptes ovis ; мелкие (0,75 мм) эктопаразитические клещи, обитающие на поверхности овечьей шкуры, под шерстью. Клещи не питаются кровью, а вместо этого заглатывают серозный экссудат, вырабатываемый кожей как часть отсроченной реакции гиперчувствительности [51] , вызванной аллергенами в фекальных гранулах клещей. [52] Болезнь редко приводит к летальному исходу, но вызывает изнурительные симптомы; у зараженных овец обычно развивается сильный зуд, который приводит к частому зуду. Зуд часто приводит к вторичным бактериальным инфекциям и отвлекает животное от еды, что приводит к потере веса. [53] В результате заражения ухудшается состояние шерсти, что в сочетании с потерей веса значительно снижает ценность животного для фермера. Это также высококонтагиозная инфекция, при которой клещи могут выживать и оставаться заразными до 16 дней вне хозяина, [54] , поэтому она может быстро распространяться по стаду.

Инвазии Psoroptes ovis лечат тем же набором препаратов, что и обсуждавшиеся выше паразиты человека. Линдан был представлен для лечения парши овец в Великобритании в 1948 году, и вскоре после этого (1952 год) болезнь была искоренена в стране. [55] К сожалению, паразит был повторно завезен в Великобританию в 1973 г. через инфицированных животных, завезенных из-за границы, и снова стал широко распространенным. На тот момент линдан все еще был одобрен для лечения парши, но в 1985 году он был отозван после того, как он был связан с наличием токсичных остатков в мясе. [56] К этому времени были доступны альтернативные методы лечения; как органофосфаты (такие как диазинон и пропетамфос), так и синтетические пиретроиды (флуметрин и циперметрин) успешно лечили паршу. [55] Погружение с использованием одного из этих методов лечения было обязательным в Великобритании в период с 1973 по 1992 год, после чего правительство отменило регулирование этого заболевания. Макроциклические лактоны также стали доступны в качестве инъекционных средств для лечения парши в 1990-х годах, включая ивермектин [57] и моксидектин. [58] Имея так много доступных методов лечения, оказалось трудно реализовать последовательную стратегию контроля, и болезнь остается серьезной проблемой как в Великобритании, так и за ее пределами.

Как и в случае с человеческими вредителями, о которых говорилось выше, паршевые клещи выработали устойчивость к различным видам обработки. Устойчивость к пиретроидам впервые была зарегистрирована в 1995 г. [59] , а к фосфорорганическим соединениям — в 1996 г. [60] Еще одна проблема, связанная с обработкой овечьей парши, заключается в потенциальном вредном воздействии на окружающую среду.Исследователи показали, что остатки фосфорорганических растворов могут нанести вред дикой природе, [61] , а также есть опасения по поводу воздействия используемых химикатов на фермеров. Органофосфаты были связаны с болезнью после окунания у рабочих, работающих с домашним скотом, где обычно наблюдаются гриппоподобные симптомы, а иногда и более серьезные побочные эффекты, такие как мышечные спазмы и рвота. [62] Развитие резистентности к этим методам лечения и опасности их использования позволяют предположить, что необходимы альтернативные методы борьбы с этим распространенным заболеванием домашнего скота.

Клещи домашней птицы

Еще одним очень распространенным ветеринарным паразитом является красный клещ домашней птицы, Dermanyssus gallinae . Птичьи клещи являются распространенным вредителем птичников во всем мире, особенно в Европе, с распространенностью в промышленных птичниках в Италии, по оценкам, до 90% [63] и до 60% в Великобритании. [64] D. gallinae — мелкие (длиной 1 мм) гематофаги, обычно паразитирующие на курах, хотя они также могут питаться кровью других животных, включая людей, работающих в курятниках. [65] Заражение клещами очень опасно для кур-несушек, поскольку вызывает анемию (которая в некоторых случаях может привести к летальному исходу) и снижение яйценоскости. [66] Присутствие клещей также может привести к появлению пятен крови на яйцах, что приводит к ухудшению качества продукта; [67] , и считается, что клещи могут также действовать как переносчики некоторых бактериальных и вирусных инфекций. [68]

Инвазию птичьего клеща чрезвычайно трудно лечить, поскольку клещи днем ​​прячутся в любом доступном маленьком темном месте в курятнике, а кормление происходит ночью. [66] Таким образом, фермерам очень трудно понять, какие участки обрабатывать акарицидами. Было показано, что различные акарициды эффективны против домашних клещей, включая фосфорорганические соединения, такие как тетрахлорвинфос, дихлорфос и малатион; [69] синтетические пиретроиды, такие как перметрин и деламетрин [70] и карбаматы, например карбарил. [69] Ивермектин неэффективен против домашних клещей. [71]

Несмотря на широкий спектр средств для борьбы с инвазиями домашней птицы, они остаются серьезной проблемой.Частично это может быть связано с трудностями обнаружения клещей, а также с неправильным использованием фермерами методов лечения. Сообщалось, что многие фермеры используют больше обработок, чем необходимо, когда они не видят какого-либо начального эффекта, что может способствовать развитию устойчивости к этим препаратам, а также приводит к наличию остатков токсичных акарицидов в яйцах и мясе. [63] Устойчивость к перметрину обнаружена в Чехии, [72] во Франции [73] и Швеции. [74] Недавно на птицефабриках в Италии наблюдалась множественная устойчивость к перметрину, амитразу и карбарилу. [75] Многие исследователи обеспокоены наличием остатков пестицидов в яйцах и мясе, что может привести к воздействию этих химических веществ на человека. Маранги и др. . (2012) исследовали ткани кур-несушек в Италии и обнаружили остатки перметрина и карбарила у большого количества птиц. [63] Это говорит о том, что фермеры проводят больше обработок, чем рекомендуется, что может ускорить развитие резистентности и дорого обойтись здоровью человека.

Морские вши

Аквакультура является быстрорастущей отраслью, обеспечивающей большую часть мировых запасов продовольствия. Лосось является особенно важным источником пищи и широко выращивается в нескольких странах, включая Шотландию, Ирландию, Норвегию и Канаду. Лосось, как дикий, так и выращенный на ферме, восприимчив к паразитарным инфекциям. Одним из наиболее важных с экономической точки зрения паразитов лосося является лососевая вошь, Lepeopophtheirus salmonis , представляющая собой веслоногих веслоногих, паразитирующих на атлантическом лососе ( Salmo salar ). [76] Ювенильные стадии вшей прикрепляются к коже рыбы, где они питаются слизью и, в конечном итоге, кровью, когда становятся взрослыми. Наличие вшей приводит к кровопотере у рыб, а иногда и обширному поражению тканей. Это снижает ценность рыбы и приводит к значительным убыткам на рыбных фермах. [77]

Борьба с заражением лососевых вшей обошлась мировой индустрии лосося в 2006 г. в 300 млн евро. 1990-е годы; [79] , а в начале 1990-х также использовались синтетические пиретроиды (например,грамм. циперметрин). [80] Ивермектин исследовался как средство от вшей, [81] , но в конце 1990-х годов он был заменен другим авермектином, эмамектинбензоатом. [82] Использование местных дезинфицирующих средств, таких как перекись водорода, также оказалось эффективным против заражения вшами. [79] Однако, как и другие паразиты, обсуждаемые в этом обзоре, L. salmonis стали устойчивыми ко многим из этих методов лечения. Джонс и др. .(1992) сообщили об устойчивости к дихлофосу в Шотландии в 1992 г., [83] и устойчивость к азаметифосу наблюдали в 1996 г. [84] Севатдал и Хорсберг (2003) сообщили об устойчивости к дельтаметрину в Норвегии. [85] С конца 1990-х годов эмамектин бензоат стал предпочтительным средством лечения на рыбных фермах и использовался интенсивно, что неизбежно привело к тому, что вскоре после этого стала очевидной резистентность. [86]

Из-за развития резистентности у лососевых вшей, а также сложности и стоимости применения нескольких препаратов для лечения большого количества рыб растет интерес к разработке альтернативных методов лечения, таких как биологический контроль и вакцина.Если бы можно было показать, что такие альтернативные средства контроля более рентабельны, они, несомненно, были бы одобрены индустрией выращивания лосося.

Лекарственная устойчивость

Проблема лекарственной устойчивости популяций эктопаразитов становится все более проблематичной за последние 30 лет или около того. Резистентность не к одному, а к нескольким различным классам лекарств наблюдалась у всех обсуждавшихся выше паразитов. Во многих случаях механизмы резистентности одинаковы ко всем препаратам одного класса.Органофосфаты, такие как малатион и диазинон, блокируют активность ацетилхолинэстеразы (АХЭ), что приводит к параличу у целевых видов членистоногих. [87] У паразитов наблюдались два альтернативных механизма устойчивости к фосфорорганическим соединениям; например, устойчивость к малатиону связана с увеличением экспрессии эстераз и ферментов цитохрома Р450, которые способны метаболизировать лекарство до того, как оно сможет оказать влияние на целевые виды. [88] Другим механизмом устойчивости к фосфорорганическим соединениям является усиление транскрипции АХЭ для компенсации ее блокады этими препаратами. [89] Синтетические пиретроиды действуют иначе, чем органофосфаты, воздействуя на потенциалзависимые натриевые каналы и вызывая паралич. [90] Резистентность связана со снижением чувствительности к лекарствам из-за генетических мутаций в генах-мишенях (рассмотрено в Soderlund and Knipple, 2003 [91] ). Также наблюдалось увеличение активности монооксигеназы цитохрома Р450, придающее устойчивость к синтетическим пиретроидам. [92]

Устойчивость к макроциклическому лактону еще не является общей проблемой в популяциях эктопаразитов (за исключением морских вшей, у которых устойчивость к эмамектинбензоату становится все более распространенной [86] ), однако она представляет собой серьезную проблему в паразитарных нематоды, и существует высокая вероятность возникновения подобной ситуации в популяциях эктопаразитов.Макроциклические лактоны нацелены на ГАМК и глутамат-управляемые хлоридные каналы, что приводит к притоку ионов хлорида в клетки, что приводит к параличу и, в конечном итоге, к смерти. Было предложено множество механизмов устойчивости к макроциклическим лактонам. Один механизм включает мутации в генах, кодирующих каналы, на которые они нацелены, [93] , в то время как другой связан с увеличением транскрипции переносчиков аденозинтрифосфата (АТФ)-связывающей кассеты (АВС), которые способны метаболизировать лекарства до того, как они может оказывать токсическое действие на паразита. [94] Другим механизмом устойчивости к макроциклическим лактонам, наблюдаемым у устойчивости L. salmonis к эмамектинбензоату, является снижение транскрипции генов ГАМК-зависимых хлоридных каналов. [95]

Устойчивость к противопаразитарным препаратам вызывается генетическими мутациями, естественным образом встречающимися в популяции. Когда класс препаратов впервые используется для лечения паразитов, резистентные аллели будут встречаться редко; однако по мере увеличения частоты лечения давление отбора на устойчивые аллели увеличивается, что приводит к увеличению числа устойчивых особей. [96] Этот аффект будет усиливаться, если аллель, придающий устойчивость, является доминантной, а не рецессивной. [96] Из-за короткого жизненного цикла паразитических членистоногих и их высокой плодовитости резистентность может быстро распространяться в популяции таким образом. [96] В случае паразитов домашнего скота резистентность может распространяться между фермами, когда животные, инфицированные некоторыми резистентными паразитами, перемещаются на новое место. Теперь, когда устойчивость к противопаразитарным препаратам стала такой широко распространенной проблемой, особенно у домашнего скота, ученые изучают способы ограничения распространения устойчивости.Одной из возможностей является перемещение пастбищного скота с пастбищ, где имеется много инфекционных личинок, на ранее неиспользуемые пастбища, где вероятность заражения резистентными паразитами должна быть меньше. [97] Также исследуется идея содержания населения «в убежищах». Это относится к процессу удержания части популяции паразитов от воздействия препарата, чтобы продлить персистенцию восприимчивых аллелей и замедлить скорость распространения резистентности. [98] Также было предложено использовать целенаправленное селективное лечение, при котором людей лечат только в том случае, если они соответствуют определенным критериям инфекции. [99] Хотя эти методы полезны для снижения скорости развития резистентности, они только замедляют процесс, а не предотвращают его полностью, и резистентность будет продолжать развиваться в популяциях паразитов. Таким образом, крайне важно определить альтернативные методы борьбы с основными эктопаразитарными заболеваниями, чтобы, когда эти лекарства перестанут быть эффективными, были доступны другие варианты.

Альтернативные методы контроля

Очевидно, что имеющиеся в настоящее время лекарственные препараты для борьбы с членистоногими паразитами людей и животных неэффективны в борьбе с инвазиями.У всех видов, описанных выше, развилась резистентность к одному или многим используемым химическим веществам. Чтобы контролировать эти заражения в будущем, необходимо найти альтернативные мишени для лекарств или альтернативные методы борьбы. Было бы также полезно иметь последовательные стратегии лечения для каждого заболевания. В большинстве случаев врачи и ветеринары по-разному назначают лечение как в разных странах, так и внутри них. Отсутствие последовательности не способствует успешной борьбе с болезнями.

Возможно, для борьбы с инвазиями можно использовать различные классы инсектицидных и акарицидных препаратов, таких как регуляторы роста насекомых. Поскольку это также синтетические наркотики, возможно, что в долгосрочной перспективе к ним может развиться резистентность, поэтому важно рассмотреть альтернативные методы борьбы, такие как использование биологических методов борьбы или вакцинация. В последние годы наблюдается большой интерес к разработке методов биологической борьбы и вакцинации для борьбы с паразитами членистоногих, и некоторые многообещающие результаты обсуждаются ниже.

Регуляторы роста насекомых

Другая альтернативная группа препаратов, которая еще не использовалась в такой же степени, как органофосфаты, органохлориды и синтетические пиретроиды, — это регуляторы роста насекомых (ИСР). IGR представляют собой синтетические имитаторы природных гормонов и ферментов членистоногих, которые могут ингибировать рост и развитие. [100] Существует несколько категорий IGR, включая аналоги ювенильного гормона (JHA), такие как метопрен и гидропрен; и ингибиторы синтеза хитина, такие как дифлубензурон.ЮГК имитируют ювенильный гормон, который участвует в процессе линьки между различными стадиями жизненного цикла (шелушения) у членистоногих. JHA индуцируют повышенный уровень ювенильного гормона, который препятствует размножению членистоногих-мишеней. [101] ПВД использовались против сельскохозяйственных и домашних вредителей, но в меньшей степени против паразитов человека. В настоящее время имеется один лицензированный продукт, содержащий гидропрен, для лечения постельных клопов (Genttrol Zoecon Ltd., Шаумбург, Иллинойс, США [102] ).ПАВ могут представлять собой новый набор препаратов, подходящих для лечения паразитических членистоногих; однако к некоторым домашним вредителям, включая комнатную муху Musca domestica , развилась устойчивость. [103] Ингибиторы синтеза хитина также исследовались в качестве возможных средств против видов вредителей. Они работают, блокируя производство хитина, основного компонента кутикулы членистоногих. [104] Многие ингибиторы синтеза хитина доступны для лечения видов вредителей растений, но гораздо меньше для борьбы с вредителями человека и домашнего скота. [105]

Биологический контроль

Биологический контроль может предложить экологически чистую альтернативу использованию инсектицидов и акарицидов. Были исследованы различные виды биологической борьбы с членистоногими, включая использование эфирных масел и грибов. Азадирахтин представляет собой встречающееся в природе соединение, полученное из дерева нима ( Azadirachta indica ), которое первоначально наблюдалось как отпугивающее питание саранчи. [106] С тех пор было замечено, что он сдерживает питание и нарушает рост многих видов членистоногих. [107] Он успешно используется в качестве инсектицида против многих вредителей сельскохозяйственных культур. [108] Исследования азадирахтина в качестве средства борьбы с медицинскими и ветеринарными членистоногими были более ограниченными, хотя он был исследован в качестве акарицида против клещей [109] и домашних клещей, где он был способен убить 90% клещи in vitro . [110] Доступны многие коммерческие препараты масла нима (содержащие азадирахтин), [108] , и оно нетоксично для человека, [111] , что делает его потенциальной альтернативой существующим химическим веществам, доступным для борьбы с инвазиями членистоногих. .Фактически, недавно исследовательская группа запатентовала два продукта на основе масла нима для использования против паразитических членистоногих и показала, что эти продукты эффективны против ряда видов, включая C. lectularius, P. humanus capitis и D. галлина . [112]

Другим новым биологическим методом борьбы с членистоногими паразитами является использование пептидов яда пауков. У паукообразных обнаружено большое разнообразие ядовитых пептидов, и многие из них способны действовать как нейротоксины у других членистоногих. [113] Эти пептиды вызывают паралич, воздействуя на кальциевые и натриевые каналы в нейронах членистоногих. [114] Исследования в этой области все еще находятся на ранних стадиях, и требуется много работы для выбора подходящих пептидов, нацеленных на правильный круг членистоногих. Пептиды также должны быть нетоксичными для человека и других видов-хозяев. Кроме того, необходимо учитывать метод доставки, поскольку большинство тестов in vitro включают прямую инъекцию пептидов яда членистоногим. [113] Необходимы дополнительные исследования в этой области, чтобы найти эффективный способ доставки этих биоинсектицидов.

Многие растительные экстракты и эфирные масла прошли испытания в качестве потенциальных инсектицидов и акарицидов. Было показано, что экстракты Lippia multiflora (кустарниковый чай) эффективны как против головных вшей, так и против S. scabiei , уничтожая 100% чесоточных клещей в одном исследовании. [115] Экстракт ромашки использовали в исследовании с Psoroptes cuniculi (кроличьи ушные клещи того же рода, что и овечья чесотка, Psoroptes ovis ), что привело к 100% смертности in vitro . [116] В Австралии было показано, что имеющиеся в продаже соединения на растительной основе так же эффективны, как и вещества на химической основе, например, было показано, что шампунь на основе масла чайного дерева более эффективен против головных вшей, чем перметрин. [117] Было также показано, что масло чайного дерева оказывает акарицидное действие на S. scabiei , убивая 100% клещей in vitro в исследовании, проведенном Уолтоном и др. . (2000). [14] Несколько природных соединений были протестированы против красного клеща домашней птицы, D.gallinae , в том числе масла кассии и корицы, [118] и экстракты чеснока (которые поступили в продажу в качестве лечебного средства [119] ). Эти первоначальные успехи обнадеживают, и натуральные растительные продукты становятся более привлекательными для населения. Будет очень интересно посмотреть, как в будущем увеличится разнообразие и использование растительных инсектицидов и акарицидов.

Другим методом биологической борьбы, которому в последние 20 лет уделяется большое внимание, является использование энтомопатогенных грибов.Пестициды на основе грибов использовались для борьбы с видами вредителей сельскохозяйственных культур в течение многих лет, а соединение на основе Beauvaria bassiana было разработано в 1965 году для использования против вредителя сельскохозяйственных культур, колорадского жука. [120] В настоящее время существует большое количество коммерчески доступных грибковых соединений для лечения насекомых и клещей-вредителей (рассмотрено в deFaria and Wright, 2007 [121] ). В последние годы были проведены некоторые исследования их потенциала для использования против эктопаразитов человека и животных.Steenberg and Kilpinen (2014) обнаружили, что сочетание конидий B. bassiana с осушающей пылью обеспечивает эффективное действие против красного клеща домашней птицы, D. gallinae . [122] Конидии из Metarhizium anisopliae вызывали 100% смертность у Triatoma infestans (тропический кровососущий клоп) в сочетании с диатомовой землей. [123] Использование грибковых гиф было исследовано в качестве альтернативного метода борьбы с паршой овец с конидиями M.anisopliae и B. bassiana , вызывающий 100% смертность взрослых особей P. ovis in vitro при температуре и влажности, имитирующих температуру и влажность овечьей кожи. [124] Хотя результаты in vitro являются многообещающими, существуют опасения по поводу того, как они будут применяться в полевых условиях и будет ли эффективность такой же высокой. Тем не менее, начальные тесты in vivo с M. anisopliae против P. ovis кажутся многообещающими с Abolins et al .(2007), показавшие, что конидии способны проникать в клещей хозяина. [125]

Вакцинация

Разработка защитной вакцины является возможным альтернативным методом борьбы с некоторыми членистоногими паразитами, но не со всеми. В отношении некоторых болезней было бы стратегически невозможно вакцинировать всех людей, подверженных риску заражения. Тем не менее, это многообещающая альтернатива для многих ветеринарных паразитов. Клещи, такие как Rhipicephalus ( Boophilus) microplus , являются важными эктопаразитами домашних и диких животных, и клещевые инвазии экономически влияют на производство крупного рогатого скота во всем мире.Как и в случае с эктопаразитами, о которых говорилось выше, борьба с заражением клещами крупного рогатого скота осуществлялась в первую очередь путем применения акарицидов, что привело к отбору устойчивых клещей и загрязнению окружающей среды. Это первый эктопаразит, в отношении которого в Австралии и Латинской Америке была продана коммерческая вакцина [126] , демонстрирующая осуществимость вакцинации в качестве процедуры борьбы с эктопаразитами. Вакцина основана на кишечном антигене R. microplus Bm86 и использует гематофагию клещей.Борьба с клещами с помощью вакцины осуществима, рентабельна и, что важно, безвредна для окружающей среды, что значительно снижает потребность в акарицидах.

В течение последних 15 лет исследователи использовали аналогичные подходы для разработки вакцины против парши овец. [52,127–129] Вакцинация против P. ovis является осуществимым вариантом, поскольку овцы способны формировать защитный иммунный ответ на паразита. При вторичном заражении клещами у овец вырабатывается ответ иммуноглобулина Е (IgE) намного быстрее, чем при первичном заражении, что приводит к уменьшению количества клещей и меньшему распространению поражений на теле. [52] Продукция эозинофилов (которая связана с развитием поражения) ниже при вторичных инвазиях по сравнению с первичными инвазиями. [51] Повышенные уровни IgE также связаны с защитным иммунитетом при инвазиях чесотки у коз. [130] При экспериментальном заражении собак чесоткой повторное заражение приводит к более раннему ответу IgG на клещей S. scabiei , а также к более быстрому увеличению клеточной инфильтрации тучных клеток и нейтрофилов. [131] Эти повторно зараженные животные смогли вылечиться от инфекции естественным путем без какого-либо медикаментозного лечения. Эти данные свидетельствуют о том, что у хозяев может развиться приобретенный иммунитет как к чесотке, так и к парше овец, что может способствовать повышению эффективности вакцины против этих болезней. Хотя защитный иммунитет не наблюдался при заражении птичьим клещом или морскими вшами, в обоих случаях наблюдались повышенные уровни антипаразитарного иммуноглобулина. [132,133] К сожалению, иммунная система птиц и рыб изучена не так хорошо, как иммунная система млекопитающих, и в настоящее время различные исследовательские группы работают над изучением иммунных реакций на обоих этих паразитов.

Другим критерием для разработки успешной антипаразитарной вакцины является то, поглощаются ли паразитом антитела хозяина, что позволяет им оказывать изнурительное действие. Птичьи клещи и морские вши являются паразитами, питающимися кровью, поэтому антитела хозяина попадают в организм таким образом. Хотя клещи овечьей парши и чесоточные клещи не питаются кровью, было показано, что они поглощают антитела хозяина в серозном экссудате, который они проглатывают, поэтому возможно нацеливание на антигены в кишечнике. [134,135] Кроме того, было показано, что кишечные протеазы являются потенциальной мишенью для вакцины против красного клеща домашней птицы. Макдевитт и др. . (2006) наблюдали, что употребление смеси ингибиторов протеазы вызвало смертность у D. gallinae ; [136] и антитела, направленные против пищеварительных ферментов катепсина D и катепсина L, вызывали повышенную смертность при доставке к домашним клещам в системе кормления in vitro . [137] Успешная вакцина против любого из этих видов клещей еще не создана; однако возможно, что различные антигены, оцененные до сих пор, могут быть использованы в комбинированной вакцине, которая оказалась успешным подходом для защиты от желудочно-кишечной нематоды Teladorsagiacircumcincta . [138]

В настоящее время растет интерес к разработке вакцины для защиты от лососевых вшей в связи с растущими проблемами устойчивости к эмамектинбензоату. Несколько групп в настоящее время идентифицируют потенциальные антигены с некоторыми интересными возможностями в кадре. Гомолог суболезина клеща был идентифицирован у другого вида лососевых вшей, Caligus rogercresseyi . Этот гомолог был назван my32, и в ходе испытаний вакцины было показано, что он снижает количество вшей на 57%. [139] Другие многообещающие антигены для вакцины против лососевых вшей включают трипсин, который был исследован в испытаниях против C. rogercresseyi в Чили. [140] Работа в этой области находится на ранних стадиях, но вполне вероятно, что антигены будут идентифицированы и протестированы в ходе испытаний вакцин с использованием подхода, аналогичного тому, который используется для P. ovis и D. gallinae . Если бы можно было создать эффективную вакцину для борьбы с морскими вшами, это принесло бы большую пользу лососевой промышленности, поскольку однократная вакцинация была бы намного более рентабельной, чем повторные лекарственные обработки.

Обсуждение

В течение многих лет практикующие врачи и ветеринары боролись с эктопаразитарными инвазиями. Во многих случаях использовалась последовательность обработок пестицидами, каждая из которых на какое-то время казалась успешной, прежде чем постепенно стала менее эффективной, обычно из-за появления устойчивости у целевого паразита. Здесь мы обсудили примеры того, как это произошло с эктопаразитами, имеющими медицинское значение, при этом чесотка и педикулез остаются огромной глобальной проблемой здравоохранения.Что касается ветеринарных паразитов, парша овец когда-то была искоренена в Великобритании, но теперь она снова стала плодовитой, поскольку клещи устойчивы ко многим доступным лекарствам. Ясно, что необходимо принять меры для эффективной борьбы с этими паразитами и что необходимо либо найти альтернативные лекарства, либо использовать альтернативные методы борьбы.

При поиске альтернативных медикаментозных методов лечения вполне вероятно, что потребуется определить совершенно новые классы препаратов для использования против членистоногих паразитов.Поскольку форма устойчивости одинакова в каждом классе препаратов, сомнительно, что новые препараты из классов, используемых в настоящее время, будут эффективны против эктопаразитов, поскольку мутации, ответственные за устойчивость к современным методам лечения, вероятно, придают устойчивость к альтернативным препаратам. те классы. Потенциальная избыточность классов пестицидов, таких как органофосфаты и синтетические пиретроиды, делает желательной разработку и идентификацию новых лекарств. IGR предлагают потенциальную альтернативу, но они также могут стать жертвой сопротивления в будущем.Фактически, устойчивость к некоторым IGR уже наблюдалась у других видов вредителей. [103] Однако, поскольку они еще не применялись в значительной степени для борьбы с обсуждаемыми здесь эктопаразитами, они могут быть временным решением для контроля, пока не станут доступны другие альтернативы.

За последние 20 лет возрос интерес к использованию встречающихся в природе соединений, таких как растительные экстракты и эфирные масла, для борьбы с различными эктопаразитами как человека, так и домашнего скота.Некоторые эфирные масла, включая корицу, кассию и чайное дерево, доказали свою высокую эффективность против членистоногих in vitro . [14,118] Растительный состав азадирахтин также продемонстрировал многообещающие свойства против постельных клопов, головных вшей и домашних клещей, среди прочих. [112] Использование природных соединений часто очень эффективно in vitro , но есть опасения по поводу того, может ли эта активность быть сопоставимой in vivo , поскольку продукты могут разлагаться, или в случае хозяев, таких как овцы , потенциально может быть смыт.Потребуются тщательные испытания in vivo , прежде чем какое-либо новое растительное соединение можно будет рассматривать в качестве надежного метода борьбы с этими эктопаразитами.

Использование грибковых конидий в качестве метода борьбы с инвазиями предлагает еще одну альтернативу. Это метод борьбы, используемый против многих основных вредителей сельскохозяйственных культур, и начаты первоначальные исследования для оценки его потенциала в борьбе с ветеринарными паразитами, такими как P. ovis и D. gallinae . Как и в случае с растительными продуктами, существуют опасения по поводу способности конидий оставаться на хозяине достаточно долго, чтобы воздействовать на паразита, но первоначальные исследования в этой области дали определенные надежды: M.конидии anisopliae способны проникать в P. ovis на хозяине. [125] Опять же, требуется больше испытаний in vivo , прежде чем они смогут продаваться в качестве новых продуктов для борьбы с медицинскими и ветеринарными эктопаразитами.

Другим альтернативным методом борьбы с некоторыми (но не со всеми) заражениями эктопаразитами является разработка вакцины для придания иммунитета целевым видам. Вакцинация против вредителей, таких как постельные клопы и головные вши, невозможна из-за огромного числа людей, восприимчивых к заражению, плюс характер этих заражений не поддается вакцинации из-за преходящего характера взаимодействия хозяина и паразита.Вакцинация может оказаться полезной при некоторых ветеринарных инвазиях, таких как парша овец, красные клещи домашней птицы и морские вши. Исследовательские группы в настоящее время изучают потенциальные мишени внутри этих паразитов для использования в вакцине. На данный момент ни один из протестированных антигенов не обеспечивает полной защиты, но возможно, что комбинация антигенов, каждый из которых обеспечивает некоторый уровень защиты, может быть использована для защиты скота от этих паразитов.

Подводя итог, становится все более очевидным, что текущий ассортимент препаратов, доступных для лечения эктопаразитарных инвазий людей и домашнего скота, неэффективен.Из-за персистентной природы этих паразитов против них интенсивно используется доступный набор лекарств. Это привело к развитию лекарственной устойчивости у всех обсуждаемых здесь видов, что делает их все более и более трудными для лечения. По мере того, как все больше классов лекарств становятся излишними из-за резистентности, необходимо разрабатывать новые лекарственные мишени и/или альтернативные методы контроля. Доступен широкий спектр альтернатив, но необходимо провести значительное количество исследований, прежде чем их можно будет продавать.Для решения этих проблем необходимы действия сейчас, иначе мы рискуем достичь точки в будущем, когда ни одно из доступных лекарств не будет эффективным против распространенных эктопаразитов, а распространенность будет расти еще больше, оказывая негативное влияние как на здоровье человека, так и на доступность продуктов питания.

Декларации

Конфликт интересов

Автор заявляет, что у нее нет конфликта интересов, который необходимо раскрыть.

Каталожные номера

Бас

С

,

Поле

ЛМ

.

Амплификация генов и устойчивость к инсектицидам

.

Pest Manag Sci

2011

;

67

:

886

890

.

Мелланби

К

.

Чесотка

.

Лондон

:

Oxford University Press

,

1943

.

Чозидов

О

.

Чесотка и педикулез

.

Ланцет

2000

;

355

:

819

826

.

Сено

RJ

и др.

Чесотка в развивающихся странах – ее распространенность, осложнения и лечение

.

Clin Microbiol Infect

2012

;

18

:

313

323

.

Оркин

М

.

Чесотка: что нового?

Курс Пробл Дерматол

1995

;

22

:

105

111

.

Мейкин

TL

.

Инвазии

.

Курс Пробл Дерматол

1999

;

11

:

73

118

.

Walton

SF

и др.

Повышенная аллергическая реакция на антигены Sarcoptes scabiei при корковой чесотке по сравнению с обычной чесоткой

.

Клин Вакцина Иммунол

2010

;

17

:

1428

1438

.

Arlian

LG

и др.

Выживаемость и инфекционность Sarcoptes scabiei var. canis и вар. человек

.

J Am Acad Dermatol

1984

;

11

(

2 ч. 1

):

210

215

.

Макнамара

БП

,

Кроп

С

.

Наблюдения за фармакологией изомеров гексахлорциклогексана

.

J Pharmacol Exp Ther

1948

;

92

:

140

146

.

Ли

Б

,

Грот

П

.

Чесотка: чрескожное отравление во время лечения

.

Педиатрия

1977

;

59

:

643

.

Таплин

D

и др.

Перметрин 5% дермальный крем: новое средство от чесотки

.

J Am Acad Dermatol

1986

;

15

(

5 ч. 1

):

995

1001

.

Буфет

М

,

Дюпен

N

.

Современные методы лечения чесотки

.

Фундам Клин Фармакол

2003

;

17

:

217

225

.

Scott

GR

и др.

Европейское руководство по лечению чесотки, 2010 г.

.

Int J STD AIDS

2011

;

22

:

301

303

.

Walton

SF

и др.

Исследования in vitro относительной эффективности существующих акарицидов в отношении Sarcoptes scabiei var .человек

.

Trans R Soc Trop Med Hyg

2000

;

94

:

92

96

.

Pasay

C

и др.

Анализ на основе ПЦР для исследования нокдаун-резистентности к пиретроидным акарицидам у клещей человека, вызывающих чесотку ( Sarcoptes scabiei var hominis )

.

Am J Trop Med Hyg

2006

;

74

:

649

657

.

Чабала

JC

и др.

Ивермектин, новое противопаразитарное средство широкого спектра действия

.

J Med Chem

1980

;

23

:

1134

1136

.

Meinking

TL

и др.

Лечение чесотки ивермектином

.

N Engl J Med

1995

;

333

:

26

30

.

Bartley

DJ

и др. .

Вет Паразитол

2006

;

137

:

112

118

.

Панагиотакопулу

E

,

Бакленд

P

.

Постельный клоп, Cimex lectularius L. из Египта фараонов

.

Древность

1999

;

73

:

908

911

.

Bonnefoy

X

и др.

Значение городских вредителей для общественного здравоохранения

.

Копенгаген

:

Всемирная организация здравоохранения

,

2008

.

Boase

CJ

.

Клопы – вернулись с пропасти

.

Pestic Outlook

2001

;

12

:

159

162

.

Доггетт

SL

и др.

Возрождение постельных клопов в Австралии с примечаниями об их экологии и борьбе с ними

.

Охрана окружающей среды

2004

;

4

:

30

38

.

Пользователь

RL

.

Монография Cimicidae: Hemiptera-Heteroptera

.

College Park, MD

:

Энтомологическое общество Америки

,

1966

.

Бартли

JD

,

Харлан

JH

.

Заражение постельными клопами: контроль и борьба с ним

.

Военная медицина

1974

;

I39

:

884

886

.

Томас

I

и др.

Укусы клопов: обзор

.

Int J Dermatol

2004

;

43

:

430

433

.

Башир

Б

и др.

Острое повреждение почек, вторичное в результате воздействия инсектицидов, используемых для борьбы с постельными клопами ( Cimex lectularis )

.

Am J Kidney Dis

2013

;

62

:

974

977

.

Картер

SW

.

Обзор использования синтетических пиретроидов в здравоохранении и борьбе с переносчиками вредителей

.

Pest Manag Sci

1989

;

27

:

361

374

.

Boase

CJ

и др.

Промежуточный отчет о статусе восприимчивости к инсектицидам постельных клопов в Великобритании

.

Prof Pest Control

2006

;

лето

:

12

13

.

Мур

DJ

,

Миллер

DM

.

Полевые оценки режимов обработки инсектицидами для борьбы с обыкновенным постельным клопом, Cimex lectularius (L.)

.

Pest Manag Sci

2009

;

65

:

332

338

.

Myamba

J

и др.

Устойчивость тропических клопов к пиретроидам, Cimex hemipterus , связанная с использованием обработанных надкроватных сеток

.

Мед Вет Энтомол

2002

;

16

:

448

451

.

Поттер

MF

и др.

Уничтожители постельных клопов двойного действия

.

Технологии борьбы с вредителями

2012

;

40

:

62

68

.

Гордон

JR

и др.

Популяционная изменчивость и отбор на устойчивость к пиретроид-неоникотиноидным инсектицидам постельного клопа

.

Научный представитель

2014

;

4

:

3836

.

Steelman

CD

и др.

Восприимчивость к постельным клопам Cimex lectularius L.(Heteroptera: Cimicidae), собранных на птицеводческих предприятиях, к отдельным инсектицидам

.

J Agr Urban Entomol

2008

;

25

:

41

51

.

Лехейн

МДж

.

Биология кровососущих насекомых

.

Лондон

:

Harper Collins Academic

,

1991

.

Durand

R

и др.

Устойчивость головных вшей к инсектицидам: клинические, паразитологические и генетические аспекты

.

Clin Microbiol Infect

2012

;

18

:

338

344

.

Орех

GHF

.

Биология Pediculus humanis

.

Паразитология

1917

;

10

:

80

184

.

Lebwohl

M

и др.

Терапия головных педикулезов на основе жизненного цикла, резистентности и соображений безопасности

.

Педиатрия

2007

;

119

:

965

974

.

Хансен

RC

,

О’Хейвер

Дж

.

Экономические соображения, связанные с заражением Pediculus humanus capitis

.

Clin Pediatr (Phila)

2004

;

43

:

523

527

.

Куцирка

SA

и др.

История устойчивости к линдану и головных вшей

.

Int J Dermatol

1983

;

22

:

551

555

.

Нолан

К

и др.

Токсичность линдана: всесторонний обзор медицинской литературы

.

Педиатр Дерматол

2012

;

29

:

141

146

.

Маундер

JW

.

Применение малатиона для лечения вшивых детей

.

Коммун Мед

1971

;

126

:

145

147

.

Изри

МА

,

Бриер

С

.

Первые случаи устойчивости Pediculus capitis Linné 1758 к малатиону во Франции

.

Presse Med

1995

;

24

:

1444

.

Хантер

JA

,

Баркер

SC

.

Восприимчивость головных вшей ( Pediculus humanus capitis ) к педикулицидам в Австралии

.

Паразитол Рез

2003

;

90

:

476

478

.

Yoon

KS

и др.

Резистентность и перекрестная резистентность к инсектицидам у головных вшей из Флориды и Калифорнии

.

Пестик Биохим Физиол

2004

;

139

:

994

1000

.

Кристенсен

М

и др.

Исследование устойчивости популяций головных вшей к перметрину и малатиону в Дании

.

Дж Мед Энтомол

2006

;

43

:

533

538

.

Chosidow

O

и др.

Контролируемое исследование лосьонов малатиона и d-фенотрина для Pediculus humanus var capitis -инфицированных школьников

.

Ланцет

1994

;

344

:

1724

1727

.

Burgess

IF

и др.

Головные вши, устойчивые к пиретроидным инсектицидам в Великобритании

.

БМЖ

1995

;

311

:

752

.

Рупы

V

и др.

Устойчивость головных вшей ( Pediculus capitis ) к перметрину в Чешской Республике

.

Cent Eur J Public Health

1995

;

3

:

30

32

.

Pariser

DM

и др.

Лосьон с 0,5% ивермектина для местного применения для лечения головных вшей

.

N Engl J Med

2012

;

367

:

1687

1693

.

Саргисон

N

и др.

Борьба с паршой овец путем искоренения

.

Vet Rec

2007

;

160

:

491

492

.

Van den Broek

AH

и др.

Кожные и системные реакции при первичном и контрольном заражении овец клещом овечьей чесотки, Psoroptes ovis

.

Иммунол от паразитов

2000

;

22

:

407

414

.

Huntley

JF

и др.

Идентификация тропомиозина, парамиозина и аполипофорина/вителлогенина в качестве трех основных аллергенов клеща овечьей чесотки, Psoroptes ovis

.

Иммунол от паразитов

2004

;

26

:

335

342

.

Кирквуд

AC

.

История, биология и борьба с паршой овец

.

Паразитол Сегодня

1986

;

2

:

302

306

.

О’Брайен

DJ

и др.

Выживание и сохранение инфекционности клеща Psoroptes ovis за пределами хозяина

.

Ветрез коммуна

1994

;

18

:

27

36

.

Хендерсон

Д

.

Химическая борьба с паршой овец

.

Proc Sheep Vet Soc

1991

;

15

:

29

32

.

О’Брайен

Диджей

.

Лечение псороптоза с учетом данных эпидемиологии и анамнеза

.

Вет Паразитол

1999

;

83

:

177

185

.

Солл

МД

и др.

Лечение и борьба с паршой овец ( Psoroptes ovis ) ивермектином в полевых условиях в Южной Африке

.

Vet Rec

1992

;

130

:

572

574

.

О’Брайен

DJ

и др.

Лечение и контроль псороптоза (овечьей парши) моксидектином

.

Vet Rec

1996

;

139

:

437

439

.

Synge

BA

и др.

Очевидная устойчивость P. ovis к флуметрину

.

Vet Rec

1995

;

137

:

51

.

Кларк

AM

и др.

Устойчивость клеща овечьей парши Psoroptes ovis к пропетамфосу

.

Vet Rec

1996

;

139

:

451

.

Суонстон

Д

,

Шоу

Я

.

Фосфорорганические

.

Овцевод

1990

; (

октябрьский номер

):

31

33

.

Бартл

Н

.

Тихие страдальцы безмолвной весны

.

Нью Сайент

1991

;

130

:

30

37

.

Маранги

М

и др.

Остатки акарицида у кур-несушек, естественно зараженных красным клещом Dermanyssus gallinae

.

PLoS ONE

2012

;

7

:

e31795

.

Fiddes

MD

и др.

Распространенность красного клеща домашней птицы ( Dermanyssus gallinae ) в Англии

.

Vet Rec

2005

;

157

:

233

235

.

Розен

S

и др. .

Мед Вет Энтомол

2002

;

16

:

442

444

.

Кирквуд

AC

.

Анемия домашней птицы, зараженной красным клещом Dermanysssus gallinae

.

Ветрек

1967

;

80

:

514

516

.

Рой

Л

и др.

Изучение чувствительности АХЭ красного клеща домашней птицы Dermanyssus gallinae (Acari: Mesostigmata) к органофосфатам в полевых изолятах из Франции

.

Exp Appl Acarol

2009

;

48

:

19

30

.

Valiente Moro

C

и др.

Переносная роль некоторых дерманиссоидных клещей (Acari, Mesostigmata, Dermanyssoidea)

.

Паразит

2005

;

12

:

99

109

.

Флетчер

MG

,

Акстелл

RC

. .

Exp Appl Acarol

1991

;

13

:

137

142

.

Земан

П

,

Железный

Ж

.

Чувствительность красного клеща домашней птицы, Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778), к некоторым акарицидам в лабораторных условиях

.

Exp Appl Acarol

1985

;

1

:

17

22

.

Земан

П

.

Системная эффективность ивермектина против Dermanyssus gallinae (De Geer, 1778) у кур

.

Вет Паразитол

1987

;

23

:

141

146

.

Земан

П

.

Обнаружение устойчивости красного клеща домашней птицы к акарицидам в птицеводстве Чехословакии

.

Folia Parasitol (Прага)

1987

;

34

:

369

373

.

Beugnet

F

и др.

Устойчивость красного птичьего клеща к пиретроидам во Франции

.

Vet Rec

1997

;

140

:

577

579

.

Nordenfors

H

и др.

Влияние пластиковых полосок, пропитанных перметрином, на Dermanyssus gallinae в системах беспривязного содержания кур-несушек

.

Вет Паразитол

2001

;

102

:

121

131

.

Маранги

М

и др.

Оценка чувствительности красного клеща домашней птицы, Dermanyssus gallinae (Acari: Dermanyssidae) к некоторым акарицидам в полевых популяциях из Италии

.

Exp Appl Acarol

2009

;

48

:

11

18

.

Кабата

Z

.

Паразитические копеподы британских рыб

.

Лондон

:

Британский музей (естественной истории) для Общества лучей

,

1979

.

Пайк

AW

,

Уодсворт

SL

.

Морские тюлени на лососевых: их биология и меры борьбы

.

Ад Паразитол

1999

;

44

:

233

337

.

Костелло

МДж

.

Глобальные экономические издержки от морских вшей для индустрии разведения лососевых

.

J Fish Dis

2009

;

32

:

115

118

.

Бурка

JF

и др.

Препараты в аквакультуре лососевых – обзор

.

J Vet Pharmacol Ther

1997

;

20

:

333

349

.

Hart

JL

и др.

Новый состав циперметрина для борьбы с морскими вшами на лососе ( Salmo salar )

.

Vet Rec

1997

;

140

:

179

181

.

Палмер

R

и др.

Предварительные испытания эффективности ивермектина против паразитических копепод атлантического лосося

.

Bull Eur Ass Fish Pathol

1987

;

7

:

47

54

.

Камень

J

и др..

Орган Dis Aquat

2000

;

41

:

141

149

.

Джонс

МВт

и др.

Снижение чувствительности лососевой воши Lepeophtheirus salmonis к фосфорорганическому дихлофосу

.

J Fish Dis

1992

;

15

:

197

202

.

Roth

M

и др.

Полевые испытания эффективности фосфорорганического соединения азаметифоса для борьбы с морскими вшами (Copepoda: Caligidae) у разводимого атлантического лосося ( Salmo salar )

.

Аквакультура

1996

;

140

:

217

239

.

Севатдал

S

,

Хорсберг

TE

.

Определение сниженной чувствительности морских вшей ( Lepeophtheirus salmonis Kroyer) к пиретроиду дельтаметрину с использованием биопроб и пробит-моделирования

.

Аквакультура

2003

;

218

:

21

31

.

Lees

F

и др.

Эффективность эмамектинбензоата против заражения Lepeophtheirus salmonis выращиваемого атлантического лосося ( Salmo salar L) в Шотландии, 2002–2006 гг.

.

PLoS ONE

2008

;

3

:

e1549

.

Houpt

DR

и др.

Гены, контролирующие устойчивость к малатиону в отобранной в лаборатории популяции Drosophila melanogaster

.

Геном

1988

;

30

:

844

853

.

Гао

JR

и др.

Опосредованная эстеразой устойчивость головной вши к малатиону, Pediculus capitis (Anoplura: Pediculidae)

.

Пестик Биохим Физиол

2006

;

85

:

28

37

.

Гао

JR

,

Чжу

KY

.

Повышенная экспрессия гена ацетилхолинэстеразы может придавать устойчивость к фосфорорганическим соединениям у зеленого жука, Schizaphis garminum (Homoptera: Aphididae)

.

Пестик Биохим Физ

2002

;

73

:

164

173

.

Sattelle

DB

,

Ямамото

D

.

Молекулярные мишени пиретроидных инсектицидов

.

Adv Insect Physiol

1988

;

20

:

147

213

.

Содерлунд

DM

,

Книппл

DC

.

Молекулярная биология нокдаун-резистентности к пиретроидным инсектицидам

.

Insect Biochem Mol Biol

2003

;

33

:

563

577

.

Гонсалес Аудино

P

и др.

Повышенная активность монооксигеназы, связанная с устойчивостью к перметрину у Pediculus humanus capitis (Anoplura: Pediculidae) из Аргентины

.

Дж Мед Энтомол

2005

;

42

:

342

345

.

Нью

АИ

,

Причард

РК

.

Генетическая изменчивость генов глутамат-зависимых хлоридных каналов у чувствительных и устойчивых к ивермектину штаммов Cooperia oncophora

.

Паразитология

2005

;

131

:

S85

S95

.

Джеймс

CE

,

Дэйви

МВт

.

Повышенная экспрессия транспортных белков ABC связана с устойчивостью к ивермектину у модельной нематоды Caenorhabditis elegans

.

Паразитология

2004

;

129

:

741

751

.

Кармайкл

SN

и др.

Лососевые вши ( Lepeophtheirus salmonis ), проявляющие различную чувствительность к эмамектинбензоату, различаются экспрессией мРНК нейронального ацетилхолинового рецептора и ГАМК-управляемого хлоридного канала

.

BMC Genomics

2013

;

14

:

408

423

.

Wolstenholme

AJ

и др.

Лекарственная устойчивость ветеринарных гельминтов

.

Тренды Паразитол

2004

;

20

:

469

476

.

Добсон

RJ

и др.

Многовидовая модель для оценки влияния убежищ на борьбу с глистами и устойчивость к глистам в системах выпаса овец

.

Aust Vet J

2011

;

89

:

200

208

.

Ван Вик

JA

.

Refugia – игнорируется как, возможно, самый важный фактор, влияющий на развитие устойчивости к глистам

.

Onderstepoort J Vet Res

2001

;

68

:

55

67

.

Кеньон

Ф

,

Джексон

Ф

.

Целевые подходы к лечению стада/стада и отдельных жвачных животных

.

Вет Паразитол

2012

;

186

:

10

17

.

Monhandass

SM

и др.

Гидропрен продлевает время развития и увеличивает смертность яиц индийской огневки (Lepidoptera: Pyralidae)

.

Дж Экон Энтомол

2006

;

99

:

1007

1016

.

Goodman

MH

и др.

Влияние составов аналогов ювенильного гормона на развитие и размножение постельного клопа Cimex lectularius (Hemiptera: Cimicidae)

.

Pest Manag Sci

2012

;

69

:

240

244

.

Поттер

MF

и др.

Клопы без границ: определение глобального возрождения постельных клопов

.

Мир вредителей

2010

;

сентябрь/октябрь

:

8

20

.

Поспищил

Р

и др.

Множественная резистентность большой комнатной мухи Musca domestica в Германии

.

Пестик

1996

;

48

:

333

341

.

Хаджар

NP

,

Касида

JE

.

Инсектицидные бензоилфенилмочевины: взаимосвязь между структурой и активностью в качестве ингибиторов синтеза хитина

.

Наука

1978

;

200

:

1499

1500

.

Мерцендорфер

H

.

Ингибиторы синтеза хитина: старые молекулы и новые разработки

.

Наука о Насекомых

2013

;

20

:

121

138

.

Баттерворт

JH

,

Морган

ED

.

Выделение вещества, подавляющего питание саранчовых

.

Химическая коммуна

1968

;

1

:

23

24

.

Морган

ЭД

.

Азадирахтин, научный золотой рудник

.

Bioorg Med Chem

2009

;

17

:

4096

4105

.

Мордью (Лунц)

AJ

,

Блэквелл

А

.

Азадирахтин: обновление

.

J Физиол насекомых

1993

;

39

:

903

924

.

Абдель-Шафи

S

,

Заид

АА

.

Акарицидное действие in vitro растительного экстракта масла семян тростника ( Azadirachta indica ) на яйца, неполовозрелые и взрослые стадии Hyalomma anatolicum excavatum (Ixodoidea: Ixodidae)

.

Вет Паразитол

2002

;

106

:

89

96

.

Лунд

J

и др.

Пропитанные азадирахтином ловушки для борьбы с Dermanyssus gallinae

.

Вет Паразитол

2005

;

130

:

337

342

.

Райзада

РБ

и др.

Азадирахтин, биопестицид нима: оценка субхронической токсичности у крыс

.

Food Chem Toxicol

2001

;

39

:

477

483

.

Schmahl

G

и др.

Эффективность экстракта семян нима (Tre-san, MiteStop) в отношении широкого спектра вредителей и паразитов

.

Паразитол Рез

2010

;

107

:

261

269

.

Smith

JJ

и др.

Инсектицидный потенциал ядовитых пептидов

.

Cell Mol Life Sci

2013

;

70

:

3665

3693

.

Windley

MJ

и др.

Пептиды яда пауков в качестве биоинсектицидов

.

Токсины (Базель)

2012

;

4

:

191

227

.

Оладимейи

FA

и др.

Педикулоцидные и скабицидные свойства эфирного масла Lippia multiflora

.

J Этнофармакол

2000

;

72

:

305

311

.

Маккиони

F

и др.

Акарицидная активность водных экстрактов цветков ромашки Matricaria chamomilla против клеща Psoroptes cuniculi

.

Мед Вет Энтомол

2004

;

18

:

205

207

.

Heukelbach

J

и др.

In vitro Эффективность безрецептурных растительных педикулицидов против головной вши Pediculus humanus var capitis на основе строгого стандарта оценки смертности

.

Мед Вет Энтомол

2008

;

22

:

264

272

.

Na

YE

и др.

Фумигантная токсичность масел кассии и корицы и коричного альдегида и структурно родственных соединений по отношению к Dermanyssus gallinae (Acari: Dermanyssidae)

.

Вет Паразитол

2011

;

178

:

324

329

.

Джордж

DR

и др.

Настоящий и будущий потенциал продуктов растительного происхождения для борьбы с членистоногими, имеющими ветеринарное и медицинское значение

.

Векторы-паразиты

2014

;

7

:

28

39

.

Кендрик

М

.

Пятое Царство

, 3-е изд.

Сидней

:

Mycologue Publications

,

2000

.

де Фариа

MR

,

Райт

SP

.

Микоинсектициды и микоакарициды: полный список с глобальным охватом и международной классификацией типов составов

.

Биол Контроль

2007

;

43

:

237

256

.

Стинберг

Т

,

Килпинен

О

.

Синергетическое взаимодействие между грибком Beauvaria bassiana и осушающей пылью, применяемой против красных клещей домашней птицы ( Dermanyssus gallinae)

.

Exp Appl Acarol

2014

;

62

:

511

524

.

Luz

C

и др.

Диатомовая земля и масло повышают эффективность Metarhizium anisopliae против Triatoma infestans

.

Acta Trop

2012

;

122

:

29

35

.

Lekimme

M

и др.

Патогенность и термотолерантность энтомопатогенных грибов для борьбы с паршой, Psoroptes ovis

.

Exp Appl Acarol

2008

;

46

:

95

104

.

Аболины

S

и др.

Борьба с паршой овец Psoroptes ovis in vivo и in vitro с использованием грибковых патогенов

.

Вет Паразитол

2007

;

148

:

310

317

.

де ла Фуэнте

J

и др.

Десятилетний обзор эффективности коммерческой вакцины для борьбы с заражением крупного рогатого скота клещами

.

Anim Health Res Rev

2007

;

8

:

23

28

.

Смит

WD

,

Петтит

DM

.

Иммунизация против парши овец: предварительная идентификация фракций Psoroptes ovis , обладающих защитным действием

.

Иммунол от паразитов

2004

;

26

:

307

314

.

Нисбет

AJ

и др.

Psoroptes ovis : идентификация вакцин-кандидатов с помощью иммуноскрининга

.

Exp Parasitol

2008

;

120

:

194

199

.

McNair

CM

и др.

Экспрессия генов, связанных с кормлением, у клещей овечьей парши ( Psoroptes ovis )

.

Вет Рес

2010

;

41

:

16

23

.

Тариган

С

.

Дерматопатология чесотки коз и защитный иммунитет у сенсибилизированных коз против заражения Sarcoptes scabiei

.

J Ильму Тернак дан Вет

2003

;

7

:

265

271

.

Arlian

LG

и др.

Формирование защитного иммунитета при чесотке собак

.

Вет Паразитол

1996

;

62

:

133

142

.

Harrington

D

и др.

Характеристика иммунологического ответа на инвазию Dermanyssus gallinae у домашних птиц

.

Transbound Emerg Dis

2012

;

57

:

107

110

.

Грейсон

TH

и др.

Реакция сыворотки на лососевых вшей, Lepeophtheirus salmonis (Kroyer, 1838), у естественно инфицированных лососевых и иммунизированной радужной форели, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) и кроликов

.

Рыба Моллюски Иммунол

1991

;

1

:

141

155

.

Pettit

DM

и др.

Локализация и характеристика овечьего иммуноглобулина в клещах парши овец, Psoroptes ovis

.

Вет Паразитол

2000

;

89

:

231

239

.

Рапп

CM

и др.

Наличие иммуноглобулина хозяина в кишечнике Sarcoptes scabiei (Acari: Sarcoptidae)

.

Дж Мед Энтомол

2006

;

43

:

539

542

.

McDevitt

R

и др.

Способность смеси ингибиторов протеиназ уничтожать красного клеща домашней птицы, Dermanyssus gallinae , в системе кормления in vitro

.

Вет Паразитол

2006

;

141

:

380

385

.

Bartley

K

и др.

Оценка катепсина D и L-подобных протеиназ красного клеща домашней птицы, Dermanyssus gallinae (De Geer), в качестве потенциальных кандидатов на вакцину

.

Паразитология

2012

;

139

:

755

765

.

Нисбет

AJ

и др.

Успешная иммунизация против паразитической нематоды путем вакцинации рекомбинантными белками

.

Вакцина

2013

;

31

:

4017

4023

.

Carpio

Y

и др.

Новый ген , выделенный из Caligus rogercresseyi : многообещающая цель для разработки вакцины против морских вшей

.

Вакцина

2011

;

29

:

2810

2820

.

Патрисио

М

и др.

Новый специфичный для копепод мутант трипсина в качестве антигена-кандидата для вакцины против морских вшей

. 9-я Международная конференция по морским вшам, Берген, Норвегия,

2013

.

© Королевское фармацевтическое общество, 2015 г.

Эта статья публикуется и распространяется на условиях издательства Oxford University Press, Standard Journals Publication Model (https://academic.oup.com/journals/pages/open_access/funder_policies/chorus/standard_publication_model)

эктопаразитов у лошадей | Центр здоровья животных MSD

Лошади могут поражаться рядом эктопаразитов, включая мух, мошек и вшей. Основные проблемы, связанные с этими эктопаразитами, перечислены ниже.

Мухи

Есть несколько «типов» мух, которые могут доставить лошадям мучения в весенние и летние месяцы. Кусающиеся мухи могут проколоть кожу лошади и питаться ее кровью, в то время как назойливые мухи откладывают выделения в глаза, рот, нос и другие чувствительные области лошади и вокруг них.Помимо угрозы аллергической реакции и раздражения, мухи могут переносить болезни, которые они могут передавать от лошади к лошади.

Очень распространенным видом мух является слепень (приблизительно 8-10 мм), который обычно вылетает в июне и июле, особенно в лесистой местности. Они, как правило, кусают лошадь за нижнюю часть тела, ноги, шею и холку и могут вызывать болезненные шишки. Слепни также кусают людей.

Еще одним распространенным вредителем являются мошки небольшого размера (примерно 2-5 мм).Они размножаются в быстро движущейся воде и наиболее заметны на рассвете и в сумерках. Эти мухи обычно кормятся вокруг морды, особенно внутри ушей, где они вызывают аллергические кожные реакции на свою слюну и отвлекают лошадь. Они также питаются шеей и нижней частью лошади.

Мошки и чесотка у лошадей

Сладкий зуд — распространенное кожное заболевание, поражающее многих лошадей и пони в Великобритании, и в настоящее время лекарства от него нет. Как только у лошади развивается аллергия, она, как правило, сохраняется на всю жизнь, поэтому ответственность каждого владельца лошади заключается в том, чтобы проявлять бдительность, чтобы способствовать раннему выявлению, и принимать превентивные меры для предотвращения ненужных страданий.

Сладкий зуд вызывается реакцией на слюну мокрецов в летние месяцы. Это заставляет лошадей тереть гриву, хвост, а иногда и низ. В Соединенном Королевстве аллергия на антигены, присутствующие в слюне мошек Culicoides и, в меньшей степени, члена семейства мошек под названием Simulium equinum , вызывает аллергию у лошадей. Тяжесть состояния варьируется от лошади к лошади; некоторые будут тереться только изредка, в то время как другие будут тереться догола, вызывая открытые язвы.

Лечение основано на противовоспалительной терапии, которая часто неудовлетворительна и может иметь серьезные побочные эффекты при длительном применении. Поэтому профилактические меры имеют решающее значение, чтобы избежать этого состояния и ограничить страдания, которые могут возникнуть из-за интенсивного и неослабевающего зуда.

Вши у лошадей

Вши — это бескрылые, сплюснутые насекомые, часто специфичные для хозяина и обычно длиной 2–4 мм. Когти на ногах приспособлены для цепляния и перемещения среди волосков.Вши процветают там, где они могут согреться, и их часто можно найти у корней чуба и гривы, но их можно найти на любом участке тела, особенно если шерсть густая.

Симптомы заражения вшами включают:

  • Тусклое, вялое пальто
  • Очаговое выпадение волос
  • Спутывание волос на теле, гриве и хвосте
  • Зуд и трение о столбы и стены конюшни
  • Прикусывание кожи
  • Потеря состояния в более тяжелых случаях
  • При тяжелых инвазиях может возникнуть анемия из-за кровопотери
  • Вши и их яйца видны на поверхности кожи и шерсти.

Вши легко передаются от одной лошади к другой при физическом контакте, а также могут распространяться при совместном использовании щеток и снаряжения между лошадьми. Поэтому совместное использование оборудования не рекомендуется.

Эктопаразиты | Свинья

4 декабря 2018 г. 12 минут чтения

Эктопаразиты — это паразиты, которые живут вне тела, и их значение сильно варьируется в зависимости от региона из-за различий в климате и типах систем, используемых для выращивания свиней.Эти паразиты питаются и размножаются на животном-хозяине за счет свиньи и особенно вредят молодым и подрастающим поросятам. Дополнительный стресс, связанный с заражением паразитами, может вызвать медленную прибавку в весе, в результате чего на килограмм привеса требуется больше корма, чем у неинфицированной свиньи. Наружные паразиты вызывают ряд клинических признаков у свиней, включая трение, расчесы и повреждения кожи. Некоторые паразиты также вызывают значительные экономические последствия из-за снижения скорости роста, снижения эффективности кормления и потери ценности туши при убое.

Чесоточный клещ (

Sarcoptes scabiei var suis )

Чесоточный клещ считается самым опасным внешним паразитом свиней во всем мире. Клещ sarcoptes представляет собой маленького, серовато-белого, круглого паразита около 0,5 мм в длину, видимого невооруженным глазом на темном фоне.

Жизненный цикл

Стадии жизненного цикла: яйцо → личинка → нимфа → взрослая особь, все они происходят на свинье-хозяине. Взрослая самка клеща прорывает туннели под поверхность кожи, где откладывает до 60 яиц в течение 30 дней.Яйца вылупляются примерно через пять дней, а личинки могут оставаться в родительском туннеле или прокладывать новые туннели. Цикл от яйца до оплодотворенной самки занимает от 10 до 15 дней, и на одной свинье может быть много поколений клеща.

Клиническая форма болезни

Распознаются две клинические формы болезни:

  • Гиперкератотическая форма, которая чаще всего поражает пожилых повторнородящих свиноматок и образует корки на ушах свиноматок и считается основным резервуаром клещей в стаде, заражая поросят во время кормления.Кабаны могут стать хроническими носителями.
  • Зудящая (зудящая) или гиперчувствительная форма, которая в первую очередь поражает растущих свиней, особенно при тесном содержании в группах.
Острое заболевание

Общие признаки включают дрожание ушей и сильное трение кожи о края ручки. Примерно через три-восемь недель после первоначального заражения кожа становится чувствительной к белку клеща, и у восприимчивых людей может развиться тяжелая аллергия с очень маленькими красными прыщиками, покрывающими всю кожу.Интенсивное раздражение может вызвать интенсивное растирание и кровотечение.

Хроническое заболевание

После острой фазы на ушах, по бокам шеи, локтях, передних частях скакательных суставов и на верхней части шеи развиваются толстые корки, полные клещей.

Диагностика

Диагноз саркоптоза подтверждается наличием клеща в стаде. Лучшим методом является использование фонарика для осмотра внутренней поверхности ушей племенных животных на наличие поражений, покрытых коркой.Используя инструмент, например. чайной ложке поражений, покрытых коркой, можно соскоблить, положить на черный лист бумаги и оставить на 10 минут. Через 10 минут переверните бумагу вверх дном, чтобы удалить струпья, любые присутствующие клещи прилипнут к бумаге, и их можно будет увидеть невооруженным глазом или с помощью увеличительного стекла.

Создание и поддержание свободных от чесотки популяций свиней

Клещ быстро погибает в окружающей среде и в большинстве условий на ферме обычно сохраняется до пяти дней, но до 4 недель во влажных защищенных условиях.Клещи чувствительны к высыханию, и если они подвергаются воздействию прямых солнечных лучей или сухой окружающей среды, они не выживут более 24–48 часов. Это важный фактор контроля. Когда стадо свободно от чесотки, это одна из самых простых болезней, которую можно предотвратить, потому что ее могут занести только свиньи-носители. Однако после того, как он завезен, он обычно становится эндемичным, если не принимаются меры контроля. Воздействие окружающей среды, в которой клещи все еще живы, приведет к заражению неинфицированных свиней всего за 24 часа.

Создание и содержание свободных от чесотки стад ускоряется благодаря трем важным фактам:

  • Поросята рождаются свободными от клещей
  • Клещи очень специфичны для хозяина и не выживают вдали от хозяина, а
  • Современные методы лечения очень эффективны.
Управление

Борьба с чесоткой включает выявление животных с хронической чесоткой, чтобы они могли получать систематическое и регулярное лечение для защиты молодых животных в стаде.Все программы контроля должны быть нацелены на племенное стадо. Всех животных с обширными гиперкератотическими поражениями ушей и тела следует выбраковывать, а остальных свиноматок лечить одновременно или попеременно отдельными группами перед опоросом.

Загрязненные постельные принадлежности следует удалить, а окружающую среду опрыскать инсектицидом.

  • Регулярно лечите всех свиней, чтобы предотвратить увеличение их количества.
  • Обрабатывайте хряков каждые три месяца.
  • Всегда обрабатывайте животных дважды с интервалом от 10 до 15 дней.
  • Оставьте загоны пустыми на пять дней после выселения инфицированных свиней, проведите процедуры очистки, дезинфекции и сушки с последующим опрыскиванием соответствующим инсектицидом.

Стада, свободные от чесотки, могут быть созданы путем депопуляции и повторной популяции из свободного от чесотки поголовья, путем раздельного выращивания пролеченных свиней или путем искоренения с использованием продуктов типа «авермектин» и других продуктов, зарегистрированных для этой цели.

Внедрение мер биологической безопасности, особенно при изоляции и обработке поступающего поголовья и исходного поголовья от минимального количества стад, обычно достаточно для предотвращения повторного заноса паразита.

Чесоточный клещ (Sarcoptes scabiei var suis)

Демодекозная чесотка (

Демодекс филлоидный )

Этот клещ считается относительно неважным для свиней. Он живет в волосяных фолликулах. Реакция на лечение плохая, но клещ чувствителен к акарицидам, используемым для борьбы с саркоптозом. Животных с тяжелым поражением следует выбраковывать из стада.

Свиные вши

Haematopinus suis — вошь, поражающая свиней. У него колюще-сосущий ротовой аппарат, он серовато-коричневого цвета с отметинами от коричневого до черного, хотя после кормления может приобретать голубоватый оттенок.Самки имеют длину около 6 мм, а самцы немного меньше, поэтому их легко увидеть невооруженным глазом, особенно у белой породы.

Свиная вошь зависит от хозяина и не может выживать более двух-трех дней вдали от свиней, а жизненный цикл от яйца до взрослой особи завершается за 23-30 дней. Вши встречаются на всех частях тела, но особенно в складках кожи вокруг шеи, подбородка, на боках и на внутренней стороне ног, где немного теплее и защищеннее. Вшей часто можно найти внутри ушей, которые, кажется, образуют гнезда.Передача происходит в основном при прямом контакте, хотя неинфицированные свиньи, помещенные в недавно освобожденный зараженный загон, могут заразиться.

Вшей часто обвиняют в повреждении, вызванном чесоткой, потому что оба заболевания вызывают раздражение и натирание. Сегодня вши должны быть относительно редки в стадах, поскольку лечение легкодоступно. Тяжелые инвазии приводят к анемии у молодых свиней и могут повлиять на скорость роста и эффективность корма. Наиболее сильное заражение свиными вшами обычно происходит зимой.

Жизненный цикл

Взрослая самка прикрепляет 2-4 яйца в день к волосяным стержням с помощью вещества, похожего на цемент, и может отложить до 90 яиц в течение 25-дневного периода.Эти желтые яйца можно легко заметить на темношерстных свиньях. Молодые вши (нимфы) выходят из яиц через 10–21 день, созревая до взрослых особей к 30 дням, в зависимости от условий окружающей среды. Нимфы проходят три стадии развития и питаются кровью на всех трех стадиях, прежде чем достигнут взрослой стадии. Средняя продолжительность жизни самцов и самок вшей составляет около 25 дней.

Лечение и контроль

Лечение и борьба со вшами легко достигается, потому что клещи живут на поверхности кожи и могут выжить всего в нескольких днях от своего хозяина.Лечение может применяться к свиньям в виде спреев, обливаний, инъекций и в виде лекарств в корме. Две дозы с интервалом в 10-14 дней уничтожат вшей. Все методы лечения неэффективны против яиц, поэтому их необходимо обрабатывать дважды.

Стратегии контроля и ликвидации, перечисленные для саркоптоза, в равной степени применимы и для педикулеза. К ним относятся особое внимание к ушам, обработка хряков, многократная обработка свиноматок перед опоросом, разделение чистых и нелеченых животных, если одновременно не лечится все стадо, и обработка всех интродуцированных животных.

Свиные вши (Haematopinus suis)

Клещи

Клещи поражают многие виды млекопитающих и птиц и не являются специфическими для хозяина, из-за свиной кожи они редко представляют проблему и лишь изредка встречаются в стадах на открытом воздухе.

Клещей легко обнаружить при визуальном осмотре, а их размер и внешний вид зависят от того, кормились они недавно или нет. Их можно найти на любой части тела, но чаще их можно увидеть вокруг более мягкой кожи ушей, шеи и боков.

Лечение и борьба с клещами у свиней требуется редко. Если присутствует только несколько клещей, их можно удалить вручную с помощью инструмента для удаления клещей, а свиней изолировать от зараженного пастбища. Средства, лицензированные для борьбы со вшами, обычно эффективны, и нет продуктов, лицензированных специально для лечения клещей.

Мухи

Мухи могут быть проблемой в свиноводстве из-за передачи болезней и по причинам благополучия, поскольку такие популяции мух часто используются в качестве меры гигиены в схемах гарантий.

Некоторые мухи раздражают животных своим злобным укусом, в то время как другие служат переносчиками инфекционных заболеваний.

Мухи контактируют с фекалиями, кожей, слизистыми и молочными выделениями свиней. Когда они достигают достаточно высокого уровня, они могут как раздражать свиней укусами (в зависимости от вида мух), так и стать основными переносчиками болезнетворных организмов, таких как патогенные штаммы E. coli , B. hyodysenteriae , сальмонеллы, стрептококки и ротавирус.

Крупные вспышки сальной болезни свиней и кокцидиоза могут усугубляться высокой популяцией мух, а когда свиноматки болеют маститом, мухи в больших количествах привлекаются к вымени и поверхности кожи, и они могут быть ответственны за усиление тяжелых вспышек.

Борьба с мухами во всех свинарниках должна осуществляться непрерывно в летние месяцы и подробно оговариваться в планах охраны здоровья ферм с целью предотвращения размножения мух и уничтожения взрослых мух. Размножение мух можно предотвратить, регулярно удаляя навоз и используя ловушки для мух с наживкой и инсектициды.

Комары

В эндемичных районах комары могут атаковать домашний скот, вызывая в лучшем случае дискомфорт, а в худшем — сильное раздражение. Поражения могут появляться у нескольких или у всех свиней в виде приподнятых отечных волдырей на ногах и животе. В тяжелых случаях с пораженных туш свиней при убое необходимо снимать кожу. Комары являются важными переносчиками вируса японского энцефалита и механическими переносчиками Eperythrozoon suis. Укусы комаров могут раздражать кормящих свиноматок, что приводит к увеличению количества окладов и гибели поросят.

Существует несколько мер контроля, которые могут быть реализованы для уменьшения количества комаров. В случае вспышки заболевания в качестве варианта можно рассмотреть туманообразование для уничтожения зараженной популяции взрослых комаров, а местные советы могут использовать ларвициды для предотвращения заражения человека. По возможности следует определить место размножения комаров и уничтожить личинок либо путем осушения водоемов, либо путем покрытия поверхности экологически безопасным маслом.

Эктопаразитарная нагрузка мелких млекопитающих в экосистеме Серенгети: влияние землепользования, сезона, видов-хозяев, возраста, пола и статуса размножения

  • Astúa D, Moura RT, Grelle CE, Fonseca MT (2006) Влияние приманок, типа ловушки и место для отлова мелких млекопитающих в бразильских низменных атлантических лесах.Boletim Do Museu De Biologia Mello Leitao 19:31–44

    Google ученый

  • Babolin LDS, MJFD Almeida-Silva, MR Potenza, CD Fava, V Castro, R Harakava, LH Okuda, MM Rebouças, AEDC Campos (2016) Зооноз, связанный с Rattus rattus, и влияние действий общественности по борьбе с разновидность. Arquivos do Instituto Biológico 83

  • Бакр А., Фагир М. (2016) Взаимодействия хозяина и паразита двух симпатрических мелких млекопитающих из Южной Африки.Университет Претории, Южная Африка

    Google ученый

  • Бартоломей П., Бенчини С., Бонакки А., Гасперини С., Манзо Э., Коццолино Р. (2018) Трудности визуальной идентификации пола: тематическое исследование рыжих полевок. Млекопитающее 83: 70–73. https://doi.org/10.1515/mammalia-2017-0170

    Статья Google ученый

  • Beaucournu J-C (2004) Каталог афротропических растений (Insecta-Siphonaptera) (исключение мальгаш из южных регионов).Beiträge zur Entomologie Contrib Entomol 54:185–239. https://doi.org/10.21248/contrib.entomol.54.1.185-239

    Статья Google ученый

  • Bellwood DR, Hoey AS, Choat JH (2003) Ограниченная функциональная избыточность в системах с большим разнообразием: устойчивость и функционирование экосистем на коралловых рифах. Экол Летт 6: 281–285. https://doi.org/10.1046/j.1461-0248.2003.00432.x

    Статья Google ученый

  • Bergallo HG, Magnusson WE (2004) Факторы, влияющие на использование пространства двумя видами грызунов в бразильских атлантических лесах.Млекопитающее 68: 121–132. https://doi.org/10.1515/mamm.2004.013

    Статья Google ученый

  • Boyer S, Miarinjara A, Elissa N (2014) Xenopsylla cheopis (Siphonaptera: Pulicidae) чувствительность к дельтаметрину на Мадагаскаре. PloS one 9:e111998

    Артикул Google ученый

  • Buchholz MJ, Dick CW (2017) Экология ассоциаций грызунов и эктопаразитов в южно-центральном Кентукки.Northeast Nat 24:97–110

    Статья Google ученый

  • Бернхэм К.П., Андерсон Д.Р. (2002) Практический теоретико-информационный подход. Выбор модели и мультимодельный вывод, 2-е изд. Спрингер, Нью-Йорк

    Google ученый

  • Буш А.О., Фернандес Дж.К., Эш Г.В., Сид Дж.Р., Ндез Дж.К.Ф. (2001) Паразитизм: разнообразие и экология паразитов животных. Издательство Кембриджского университета, Кембридж

    Google ученый

  • Byrom AE, Nkwabi AJ, Metzger K, Mduma SA, Forrester GJ, Ruscoe WA, Reed DN, Bukombe J, Mchetto J, Sinclair A (2015) Антропогенные стрессоры влияют на сообщества мелких млекопитающих в тропической саванне Восточной Африки в различных пространственных напольные весы.Wildl Res 42: 119–131. https://doi.org/10.1071/WR14223

    Статья Google ученый

  • Caro T (2001) Видовое богатство и изобилие мелких млекопитающих внутри и за пределами африканского национального парка. Биол Конс 98:251–257

    Статья Google ученый

  • Carraway LN (2009) Определение пола землероек Sorex (Soricomorpha: soricidae). Ам Мидл Нат 162: 87–97. https://дои.org/10.1674/0003-0031-162.1.87

    Статья Google ученый

  • Christe P, Arlettaz R, Vogel P (2000) Изменение интенсивности паразитического клеща (Spinturnix myoti) в зависимости от репродуктивного цикла и иммунокомпетентности его летучей мыши-хозяина ( Myotis myotis ). Ecol Lett 3:207–212

    Статья Google ученый

  • Christe P, Glaizot O, Evanno G, Bruyndonckx N, Devey G, Yannic G, Patthey P, Maeder A, Vogel P, Arlettaz R (2007) Выбор пола хозяина и эктопаразитов: предпочтение и более высокая выживаемость самок хосты.Дж Аним Экол 76: 703–710. https://doi.org/10.1111/j.1365-2656.2007.01255.x

    Статья пабмед Google ученый

  • Чулуун Б., Мариана А., Хо Т., Мохд Кулайми Б. (2005) Предварительное исследование эктопаразитов мелких млекопитающих в природном парке Куала-Селангор. Троп Биомед 22:243–247

    CAS пабмед Google ученый

  • Civitello DJ, Cohen J, Fatima H, Halstead NT, Liriano J, McMahon TA, Ortega CN, Sauer EL, Sehgal T, Young S (2015) Биоразнообразие подавляет паразитов: обширные доказательства эффекта разбавления.Proc Natl Acad Sci 112:8667–8671. https://doi.org/10.1073/pnas.1506279112

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Crespin L, Papillon Y, Abdoulaye D, Granjon L, Sicard B (2008) Ежегодное наводнение, выживание и пополнение популяции грызунов на равнине реки Нигер в Мали. Дж. Троп Экол 24: 375–386. https://doi.org/10.1017/S0266467408005105

    Статья Google ученый

  • Cruz LD, Fernandes FR, Linhares AX (2012) Сходства между фауной эктопаразитов сигмодонтных грызунов: филогенетические и географические влияния.Паразитология 139: 1749–1756. https://doi.org/10.1017/S0031182012001126

    Статья пабмед Google ученый

  • Dill T, Dobler G, Saathoff E, Clowes P, Kroidl I, Ntinginya E, Machibya H, Maboko L, Löscher T, Hoelscher M (2013) Высокая серораспространенность риккетсий группы сыпного тифа, юго-западная Танзания. Emerg Infect Dis 19:317. https://doi.org/10.3201/eid1902.120601

    Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Ezenwa VO (2004)Взаимодействие между рационом хозяина, состоянием питания и желудочно-кишечной паразитарной инфекцией у диких полорогих.Int J Parasitol 34: 535–542. https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2003.11.012

    Статья пабмед Google ученый

  • Fichet-Calvet E, Wang J, Jomaa I, Ismail RB, Ashford R (2003) Характер заражения солитером Raillietina trapezoides у жирной песчаной крысы Psammomys obesus в Тунисе: сезон, климатические условия, хозяин Эффекты возраста и скученности. Паразитология 126: 481–492. https://doi.org/10.1017/s0031182003003056

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Фолстад И., Картер А.Дж. (1992)Паразиты, умные самцы и недостаток иммунокомпетентности.Ам Нат 139: 603–622. https://doi.org/10.1086/285346

    Статья Google ученый

  • Goater TM, Goater CP, Esch GW (2014) Паразитизм: разнообразие и экология паразитов животных. Издательство Кембриджского университета, Кембридж

    Google ученый

  • Гомес Д., Соммаро Л., Стейнманн А., Чиапперо М., Приотто Дж. (2011) Расстояния перемещения двух видов симпатрических грызунов в линейных местообитаниях агроэкосистем Центральной Аргентины.Mamm Biol 76:58–63

    Статья Google ученый

  • Gratz N (1997) Бремя болезней, переносимых грызунами, в Африке к югу от Сахары. Бельг Джей Зоол 127: 71–84

    Google ученый

  • Хамиди К., Нурани Л., Мораввей Г. (2015) Взаимосвязь распространенности эктопаразитов с сезоном отлова, местонахождением и видами грызунов-хозяев в Иране. Персидский Дж. Акарол 4:4

    Google ученый

  • Хиеронимо П., Кихупи Н.И., Кимаро Д.Н., Гулинк Х., Мсанья Б.М., Лейрс Х., Декерс Дж.А. (2014) Вклад землепользования в распределение нагрузки блохами-грызунами в эндемичной по чуме зоне округа Лушото, Танзания.Танзания J Health Res 16:10. https://doi.org/10.4314/thrb.v16i3.10

    Статья Google ученый

  • Hillgarth N, Wingfield JC (1997)Тестостерон и иммуносупрессия у позвоночных: значение для опосредованного паразитами полового отбора. Паразиты и возбудители. Springer, Берлин, стр. 143–155

    Глава Google ученый

  • Холдо Р.М., Синклер А.Р., Добсон А.П., Мецгер К.Л., Болкер Б.М., Ричи М.Е., Холт Р.Д. (2009) Опосредованный болезнью трофический каскад в Серенгети и его последствия для экосистемы C.PLoS Биол 7:e1000210. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.1000210e1000210

    Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Hugot J-P, Baujard P, Morand S (2001) Биоразнообразие гельминтов и нематод как область исследования: обзор. Нематология 3:199–208. https://doi.org/10.1163/156854101750413270

    Статья Google ученый

  • Johnson P, Thieltges D (2010) Разнообразие, приманки и эффект разбавления: как экологические сообщества влияют на риск заболевания.J Exp Biol 213:961–970. https://doi.org/10.1242/jeb.037721

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Камугиша М., Гесасе С., Минджа Д., Мгема С., Млвило Т., Маяла Б. (2007) Модель и пространственное распространение чумы в Лушото, северо-восточная Танзания. Tanzan J Health Res 9:12–18

    CAS Google ученый

  • Katakweba A, Kipanyula M, Durnez L, Mhamphi G, Luziga C, Mgode G, Machang’u R (2013) Грызуны и землеройки как переносчики зоонозных спирохет и трипаносом в Танзании.Танзан Вет Дж 28:19

    Google ученый

  • Кисинг Ф., Остфельд Р.С. (2021a) Влияние разведения на экологию болезней. Эколь Летт. https://doi.org/10.1111/ele.13875

    Статья пабмед Google ученый

  • Кисинг Ф., Остфельд Р.С. (2021b) Воздействие биоразнообразия и утраты биоразнообразия на зоонозные заболевания. Proc Natl Acad Sci. https://doi.org/10.1073/pnas.2023540118

    Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Кисинг Ф., Холт Р.Д., Остфельд Р.С. (2006) Влияние разнообразия видов на риск заболевания.Ecol Lett 9: 485–498. https://doi.org/10.1111/j.1461-0248.2006.00885.x

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Кисинг Ф., Белден Л.К., Дашак П., Добсон А., Харвелл К.Д., Холт Р.Д., Хадсон П., Джоллес А., Джонс К.Е., Митчелл К.Э. (2010) Воздействие биоразнообразия на возникновение и передачу инфекционных заболеваний. Природа 468: 647–652. https://doi.org/10.1038/nature09575

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Халил Х., Экке Ф., Эвандер М., Магнуссон М., Хорнфельдт Б. (2016) Ухудшение состояния экосистемы и эффект разбавления.Научный отчет 6: 1–11. https://doi.org/10.1038/srep31314

    CAS Статья Google ученый

  • Kingdon J (2015) Полевой справочник Kingdon по африканским млекопитающим. Издательство Блумсбери, Лондон

    Google ученый

  • Коралло Н.П., Винарски М.В., Краснов Б.Р., Шенброт Г.И., Муйо Д., Пулен Р. (2007) Существуют ли общие правила, регулирующие разнообразие паразитов? Мелкие млекопитающие-хозяева и сообщества гамазовых клещей.Раздача дайверов 13: 353–360. https://doi.org/10.1111/j.1472-4642.2007.00332.x

    Статья Google ученый

  • Kouadio L, Nowak K, Couacy-Hymann E, Akoua-Koffi C, Düx A, Zimmermann F, Allali BK, Kourouma L, Bangoura K, Koendgen S (2020) Обнаружение возможного распространения нового хантавируса в Натальная мастомия из Гвинеи. Вирусные гены 56: 95–98. https://doi.org/10.1007/s11262-019-01709-4

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Краснов Б.Р. (2008) Функциональная и эволюционная экология блох: модель для экологической паразитологии.Издательство Кембриджского университета, Кембридж

    Книга Google ученый

  • Краснов Б., Шенброт Г., Медведев С., Ващенок В., Хохлова И. (1997) Отношения хозяин-среда обитания как важная детерминанта пространственного распределения сообществ блох (Siphonaptera) на грызунах в пустыне Негев. Паразитология 114:159–173

    Статья Google ученый

  • Краснов Б., Хохлова И., Шенброт Г. (2002) Влияние плотности хозяина на распространение эктопаразитов: пример грызуна, зараженного блохами.Экология 83:164–175. https://doi.org/10.1890/0012-9658(2002)083[0164:TEOHDO]2.0.CO;2

    Статья Google ученый

  • Краснов Б., Сарфати М., Аракелян М., Хохлова И., Бурделова Н., Деген А. (2003) Специфичность хозяина и эффективность кормления кровососущих паразитов: схемы питания блохи Parapulex chephrenis на двух видах пустынных грызунов . Parasitol Res 90: 393–399. https://doi.org/10.1007/s00436-003-0873-y

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Краснов Б.Р., Шенброт Г.И., Хохлова И.С., Аллан Деген А. (2004) Взаимосвязь между разнообразием хозяев и разнообразием паразитов: сообщества блох на мелких млекопитающих.J Biogeogr 31: 1857–1866. https://doi.org/10.1111/j.1365-2699.2004.01132.x

    Статья Google ученый

  • Краснов Б.Р., Шенброт Г.И., Хохлова И.С., Пулин Р. (2007) Географическая изменчивость в контроле разнообразия «снизу вверх»: блохи и их мелкие млекопитающие-хозяева. Глоб Экол Биогеогр 16:179–186. https://doi.org/10.1111/j.1466-8238.2006.00273.x

    Статья Google ученый

  • Краснов А., Скугор С., Тодорчевич М., Гловер К.А., Нильсен Ф. (2012)Экспрессия генов в коже атлантического лосося в ответ на заражение паразитической копеподой Lepeophtheirus salmonis , имплантатом кортизола и их комбинацией.Геномика BMC 5:130. https://doi.org/10.1186/1471-2164-13-130

    CAS Статья Google ученый

  • Краснов Б.Р., Бордес Ф., Хохлова И.С., Моран С. (2012b) Гендерный паразитизм у мелких млекопитающих: закономерности, механизмы, последствия. Млекопитающее 76: 1–13. https://doi.org/10.1515/mammalia-2011-0108

    Статья Google ученый

  • Краснов Б.Р., Шенброт Г.И., Хохлова И.С., Деген А.А. (2016) Признаковые и филогенетические ассоциации между паразитами и их хозяевами: на примере мелких млекопитающих и блох Палеарктики.Ойкос 125:29–38. https://doi.org/10.1111/oik.02178

    Статья Google ученый

  • Kunz TH, Wemmer C, Hayssen V (1996)Пол, возраст и репродуктивное состояние млекопитающих. В: Wilson DE, Cole FR, Nichols JD, Rudran R, Foster MS (eds) Измерение и мониторинг биологического разнообразия: стандартные методы для млекопитающих. Smithsonian Institution Press, Вашингтон, округ Колумбия, стр. 279–290

    Google ученый

  • Лабруна М.Б., Терассини Ф., Камарго ЛМА (2009) Заметки о динамике популяции клещей Amblyomma (Acari: Ixodidae) в Бразилии.Дж Паразитол 95: 1016–1018. https://doi.org/10.1645/GE-1878.1

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Laudisoit A, Leirs H, Makundi R, Krasnov BR (2009) Сезонная зависимость блох, паразитирующих на мелких млекопитающих, и их среда обитания в Танзании. Интегр Зоол 4: 196–212. https://doi.org/10.1111/j.1749-4877.2009.00150.x

    Статья пабмед Google ученый

  • Линар С., Ламарк П., Хейман П., Дюкоффр Г., Луясу В., Терсаго К., Ванвамбеке С.О., Ламбин Э.Ф. (2007) Детерминант географического распространения инфекций, вызванных вирусом Пуумала и клещевым боррелиозом в Бельгии.Int J Health Geogr 6:15

    Статья Google ученый

  • Lourenço EC, Lacerda AC, Bergallo HG (2020) Структура сообщества вшей, заражающая Trinomys iheringi (Thomas, 1911) — распространенность, предвзятость по признаку пола и климатические переменные на тропическом острове. Int J Parasitol Parasites Wildlife 13: 299–306. https://doi.org/10.1016/j.ijppaw.2020.11.004

    Статья Google ученый

  • Лира-Хорхе М., Пивелло В. (2001) Комбинирование живых ловушек и ловушек для обследования мелких млекопитающих в местах обитания серрадо (бразильская саванна).Млекопитающие 65:524–530

    Google ученый

  • Магиге Ф., Сензота Р. (2006) Изобилие и разнообразие грызунов на границе между человеком и дикой природой в западной части Серенгети, Танзания. Afr J Ecol 44:371–378

    Статья Google ученый

  • Martin LB, Hopkins WA, Mydlarz LD, Rohr JR (2010) Влияние антропогенных глобальных изменений на иммунные функции и устойчивость к болезням.Ann NY Acad Sci 1195:129–148

    Статья Google ученый

  • Massawe A, Rwamugira W, Leirs H, Makundi R, Mulungu LS (2006) Влияют ли методы ведения сельского хозяйства на динамику популяции грызунов? тематическое исследование многососковых полевых крыс Mastomys natalensis в Танзании. Афр Дж. Экол 45: 293–301. https://doi.org/10.1111/j.1365-2028.2006.00709.x

    Статья Google ученый

  • Матти С., МакГЕОЧ М.А., Краснов Б.Р. (2010) Паразито-специфические вариации и степень паразитизма, ориентированного на мужчин; пример с южноафриканским грызуном и эктопаразитарными членистоногими.Паразитология 137: 651–660. https://doi.org/10.1017/S00311820099

    Статья пабмед Google ученый

  • Mayamba A, Byamungu RM, Broecke BV, Leirs H, Hieronimo P, Nakiyemba A, Isabirye M, Kifumba D, Kimaro DN, Mdangi ME (2020) Факторы, влияющие на распространение и численность мелких грызунов-вредителей в сельскохозяйственных ландшафтах в Восточной Уганде. J Vertebr Biol 69 (20002): 20001

    Google ученый

  • Макколи Д.Дж., Пинский М.Л., Палумби С.Р., Эстес Дж.А., Джойс Ф.Х., Уорнер Р.Р. (2015) Морская дефауна: потеря животных в мировом океане.Наука 347:6219

    Статья Google ученый

  • Мдума С.А., Синклер А., Хилборн Р. (1999) Пища регулирует гну Серенгети: 40-летний рекорд. Дж Аним Экол 68: 1101–1122. https://doi.org/10.1046/j.1365-2656.1999.00352.x

    Статья Google ученый

  • Mize EL, Tsao JI, Maurer BA (2011) Среда обитания коррелирует с пространственным распределением эктопаразитов на Peromyscus leucopus в южном Мичигане.J Vector Ecol 36: 308–320. https://doi.org/10.1111/j.1948-7134.2011.00171.x

    Статья пабмед Google ученый

  • Molyneux DH (2003) Общие темы в изменении сценариев трансмиссивных болезней. Trans R Soc Trop Med Hyg 97: 129–132. https://doi.org/10.1016/S0035-9203(03)-6

    Статья пабмед Google ученый

  • Мур С.Л., Уилсон К. (2002) Паразиты как стоимость полового отбора в естественных популяциях млекопитающих.Наука 297:2015–2018. https://doi.org/10.1126/science.1074196

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Мур С.М., Монаган А., Борчерт Дж.Н., Мпанга Дж.Т., Атику Л.А., Беглер К.А., Монтеньери Дж., Макмиллан К., Гейдж К.Л., Эйзен Р.Дж. (2015) Сезонные колебания сообществ мелких млекопитающих и блох в очаге чумы в Уганде: доказательства причастности Arvicanthis niloticus и Crocidura spp. в качестве ключевых хозяев в передаче Yersinia pestis .Векторы-паразиты 8: 1–15. https://doi.org/10.1186/s13071-014-0616-1

    Статья Google ученый

  • Моран С., Де Беллок Дж. Г., Станко М., Миклисова Д. (2004) Связан ли половой эктопаразитизм с половым диморфизмом размеров у мелких млекопитающих Центральной Европы? Паразитология 129:505–510

    CAS Статья Google ученый

  • Нортон-Гриффитс М., Херлокер Д., Пенникьюк Л. (1975) Характер осадков в экосистеме Серенгети, Танзания.Афр Дж. Экол 13: 347–374. https://doi.org/10.1111/j.1365-2028.1975.tb00144.x

    Статья Google ученый

  • Нанн К.Л., Альтизер С., Джонс К.Е., Сехрест В. (2003) Сравнительные тесты разнообразия видов паразитов у приматов. Ам Нат 162: 597–614. https://doi.org/10.1086/378721

    Статья пабмед Google ученый

  • Огуге Н., Дерден Л., Кейранс Дж., Балами Х., Шван Т. (2009) Эктопаразиты (сосущие вши, блохи и клещи) мелких млекопитающих на юго-востоке Кении.Мед Вет Энтомол 23:387–392. https://doi.org/10.1111/j.1365-2915.2009.00820.x

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Peng P-Y, Guo X-G, Jin D-C, Dong W-G, Qian T-J, Qin F, Yang Z-H, Fan R (2018) Ландшафты с различным биоразнообразием влияют на распространение мелких млекопитающих и их эктопаразитических клещей-чиггеров: сравнительное исследование с юго-запада Китай. PLoS ONE 13:e0189987. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0189987

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Perez-Orella C, Schulte-Hostedde AI (2005) Влияние пола и размера тела на нагрузку эктопаразитов у северной белки-летяги ( Glaucomys sabrinus ). Кан Дж. Зул 83: 1381–1385. https://doi.org/10.1139/z05-126

    Статья Google ученый

  • Pietrock M, Marcogliese DJ (2003) Стадии свободноживущих эндогельминтов: во власти условий окружающей среды.Тенденции Параситол 19: 293–299. https://doi.org/10.1016/S1471-4922(03)00117-X

    Статья пабмед Google ученый

  • Постава Т., Надь З. (2016)Изменение моделей паразитизма у летучих мышей во время спячки: влияние видов-хозяев, ресурсов, состояния здоровья и периода гибернации. Parasitol Res 115: 3767–3778. https://doi.org/10.1007/s00436-016-5138-7

    Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Postawa T, Szubert-Kruszyńska A (2014) Зависит ли паразитарная нагрузка от размера скопления хостов? Случай большой ушастой летучей мыши Myotis myotis (Mammalia: Chiroptera) и паразитирующего на ней клеща Spinturnix myoti (Acari: Gamasida).Parasitol Res 113: 1803–1811. https://doi.org/10.1007/s00436-014-3826-8

    Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Poulin R (2007) Существуют ли общие законы в экологии паразитов? Паразитология 134: 763–776. https://doi.org/10.1017/S0031182006002150

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Ротшильд М., Шлейн Ю., Паркер К., Невилл С., Штернберг С. (1973) Прыжок блохи в полете.Sci Am 229:92–101

    Статья Google ученый

  • Шмидт Г.Д., Робертс Л.С., Янови Дж. (1977) Основы паразитологии. Мосби Сент-Луис, Кирквуд

    Google ученый

  • Searle J (1985) Методы определения пола обыкновенных бурозубок ( Sorex araneus ). J Zool 206:279–282

    Статья Google ученый

  • Senzota R (1982) Среда обитания и пищевые привычки травяных крыс ( Arvicanthis niloticus ) в Национальном парке Серенгети, Танзания.Afr J Ecol 20:241–252

    Статья Google ученый

  • Шенброт Г., Краснов Б., Хохлова И., Демидова Т., Филден Л. (2002) Зависящие от среды обитания различия в архитектуре и микроклимате нор серой змеи Сундевалла ( Meriones crassus ) (Rodentia: Gerbillinae) в пустыне Негев , Израиль. J Засушливая среда 51: 265–279. https://doi.org/10.1006/jare.2001.0945

    Статья Google ученый

  • Shilereyo M, Magige FJ, Ogutu JO, Røskaft E (2020) Демография сообщества мелких млекопитающих и репродуктивная сезонность под защитой, пастбищное животноводство и сельское хозяйство в экосистеме Серенгети, Танзания.Int J Biodiv Conserv 12: 253–269. https://doi.org/10.5897/IJBC2020.1397

    Статья Google ученый

  • Shilereyo MT, Magige FJ, Ogutu JO, Røskaft E (2021) Землепользование и выбор среды обитания мелкими млекопитающими в экосистеме Большого Серенгети Танзании. Global Ecol Conserv 27:e01606

    Статья Google ученый

  • Смит Д.Д., Уэйклин Д. (1994) Введение в паразитологию животных.Издательство Кембриджского университета, Кембридж

    Google ученый

  • Снайпс М., Тейлор, округ Колумбия (2014) Выбор модели и информационные критерии Акаике: пример из рейтингов вин и цен. Винная экономика и политика 3: 3–9. https://doi.org/10.1016/j.wep.2014.03.001

    Статья Google ученый

  • Солиман С., Марзук А.С., Мейн А.Дж., Монтассер А.А. (2001) Влияние пола, размера и возраста комменсальных крыс-хозяев на параметры заражения их эктопаразитами в сельской местности Египта.Дж Параситол 87: 1308–1316. https://doi.org/10.1645/0022-3395(2001)087[1308:EOSSAA]2.0.CO;2

    CAS Статья пабмед Google ученый

  • Станко М., Миклисова Д., Де Беллок Дж. Г., Моран С. (2002) Плотность млекопитающих и закономерности богатства и численности видов эктопаразитов. Экология 131: 289–295. https://doi.org/10.1007/s00442-002-0889-5

    Статья пабмед Google ученый

  • Stanley WT, Rogers MA, Kihaule PM, Munissi MJ (2014) Распределение по высоте и экология мелких млекопитающих на самой высокой горе Африки.ПЛОС ОДИН 9:e109904. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0109904

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Sutton GP, ​​Burrows M (2011) Биомеханика прыжков у блох. J Exp Biol 214: 836–847. https://doi.org/10.1242/jeb.052399

    Статья пабмед Google ученый

  • Suzán G, Marcé E, Giermakowski JT, Mills JN, Ceballos G, Ostfeld RS, Armién B, Pascale JM, Yates TL (2009) Экспериментальные данные о снижении разнообразия грызунов, вызывающем увеличение распространенности хантавируса.ПЛОС ОДИН 4:e5461. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0005461

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Таварес Д.К., Моура Дж.Ф., Асеведо-Трехос Э., Мерико А. (2019) Признаки, общие для морской мегафауны, и их взаимосвязь с функциями и услугами экосистемы. Фронт март науч. 6:262. https://doi.org/10.3389/fmars.2019.00262

    Статья Google ученый

  • Тешоме З., Гирмай Т. (2019) Эктопаразиты мелких млекопитающих: экология, инфекция и управление в меняющемся мире.Int J Curr Res 7: 17123–17128

    Google ученый

  • Томас К.А., Абдул А., Массаве А.В., Макунди Р.Х., Мачангу Р.С., Кесси С.Т. (2020) Распространенность Rickettsia typhi среди блох-грызунов из районов с историей чумы и без нее в районе Мбулу, Танзания. Afr J Microbiol Res 14:65–70

    Статья Google ученый

  • Timbuka C, Kabigumila J (2006) Разнообразие и численность мелких млекопитающих в Серенгети Копьес, Танзания.Tanz J Sci 32: 1–12. https://doi.org/10.4314/tjs.v32i1.18424

    Статья Google ученый

  • Утсуми С., Андо Ю., Мики Т. (2010) Связи между косвенными эффектами, опосредованными чертами: новая структура для сети косвенного взаимодействия. Popul Ecol 52: 485–497. https://doi.org/10.1007/s10144-010-0237-2

    Статья Google ученый

  • Ван Девентер М., Нел Дж. (2006) Среда обитания, пища и структура сообщества мелких млекопитающих в Намакваленде.Коэдо 49: 99–109. https://doi.org/10.4102/koedoe.v49i1.103

    Статья Google ученый

  • Vandegrift KJ, Raffel TR, Hudson PJ (2008) Паразиты препятствуют летнему размножению белоногих мышей, Peromyscus leucopus . Экология 89: 2251–2258. https://doi.org/10.1890/07-1935.1

    Статья пабмед Google ученый

  • Вильджоен Х., Беннет Н.К., Юкерманн Э.А., Лютерманн Х. (2011) Роль признаков хозяина, сезона и размера группы в паразитарной нагрузке кооперативного млекопитающего.ПЛОС ОДИН 6:e27003. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0027003

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Винарский М.В., Коралло Н.П., Краснов Б.Р., Шенброт Г.И., Пулин Р. (2007) Угасание сходства сообществ гамазовых клещей, паразитирующих на палеарктических мелких млекопитающих: географическое расстояние, видовой состав хозяев или окружающая среда. J Биогеогр 34: 1691–1700. https://doi.org/10.1111/j:1365-2699.2007.01735.х

    Артикул Google ученый

  • Уокер А., Буаттур А., Камикас Дж., Эстрада-Пенья А., Хорак И., Латиф А., Престон П.М. (2014) Страница 227 Клещи домашних животных в Африке: руководство по идентификации видов. Отчеты о биологических науках, Эдинбург

    Google ученый

  • Wedekind C, Folstad I (1994) Адаптивная или неадаптивная иммуносупрессия половыми гормонами? Ам Нат 143: 936–938.https://doi.org/10.1086/285641

    Статья Google ученый

  • Уилсон К., Бьорнстад О., Добсон А., Мерлер С., Поглайен Г., Рэндольф С., Рид А., Скорпинг А. (2002) Гетерогенность макропаразитарных инфекций: закономерности и процессы. Экология болезней диких животных. стр. 6–44

    Google ученый

  • Young HS, Dirzo R, Helgen KM, McCauley DJ, Billeter SA, Kosoy MY, Osikowicz LM, Salkeld DJ, Young TP, Dittmar K (2014) Сокращение крупной дикой природы увеличивает распространенность заболеваний, передаваемых грызунами, на ландшафтном уровне в Африке.Proc Natl Acad Sci 111: 7036–7041. https://doi.org/10.1073/pnas.1404958111

    CAS Статья пабмед ПабМед Центральный Google ученый

  • Young HS, Dirzo R, McCauley DJ, Agwanda B, Cattaneo L, Dittmar K, Eckerlin RP, Fleischer RC, Helgen LE, Hintz A (2015) Факторы интенсивности и распространенности паразитизма блох на мелких млекопитающих в Восточной Африке экосистемы саванны. Дж Паразитол 101: 327–335. https://doi.org/10.1645/14-684.1

    Артикул пабмед Google ученый

  • Янг Х.С., Макколи Д.Дж., Дирзо Р., Нанн К.Л., Кампана М.Г., Агванда Б., Отарола-Кастильо Э.Р., Кастильо Э.Р., Прингл Р.М., Веблен К.Е. (2017) Взаимодействие землепользования и климата с переносимыми грызунами патогенами в центральной Кении. Философ Trans Royal Soc B Biol Sci 372: 20160116. https://doi.org/10.1098/rstb.2016.0116

    Статья Google ученый

  • Чжан Л., Парсонс С., Дашак П., Вэй Л., Чжу Г., Чжан С. (2010) Изменение численности эктопаразитических клещей плоскоголовых летучих мышей.Дж. Млекопитающее 91: 136–143. https://doi.org/10.1644/08-MAMM-A-306R2.1

    Статья Google ученый

  • Зуур А.Ф., Иено Э.Н., Элфик К.С. (2010) Протокол исследования данных, позволяющий избежать общих статистических проблем. Методы Ecol Evol 1:3–14. https://doi.org/10.1111/j.2041-210X.2009.00001.x

    Статья Google ученый

  • Эндо- и эктопаразиты у кроликов

    Существует множество эндо- и эктопаразитов, которые могут поражать домашних кроликов.Многие из них могут не оказывать клинического воздействия на кролика, и поэтому лечение может не потребоваться. Однако для тех, которые вызывают клинические признаки, крайне важно проводить раннюю диагностику и правильное лечение, поскольку любая задержка в этом может иметь серьезные последствия для здоровья и благополучия кролика, а также для здоровья человека, поскольку многие из них являются зоонозными.

    Кролики могут поражаться как эндопаразитарными, так и эктопаразитарными инфекциями. В то время как некоторые из них могут проявлять клинические признаки, другие могут протекать бессимптомно или иметь очень слабые клинические признаки, особенно на начальных стадиях.Как и в случае с другими видами, попадающими в практику, сначала необходимо собрать тщательный анамнез и провести обследование, а для постановки точного диагноза обычно назначаются диагностические тесты (Keeble, 2018).

    Некоторые паразиты также являются зоонозами, поэтому правильная идентификация и лечение жизненно важны.

    Лечение часто основано на информации, экстраполированной на то, что эффективно у собак и кошек, и продукты не всегда могут быть лицензированы для использования у домашних кроликов.

    Эктопаразиты

    Клещи

    Кроличьего мехового клеща Cheyletiella parasitovorax часто называют «ходячей перхотью», так как иногда можно увидеть движение клеща невооруженным глазом (рис. 1).Нероющий клещ живет на кератиновом слое эпидермиса, вызывая корки и чешуйки, и считается, что большинство домашних кроликов переносят клеща без клинических признаков. Однако, когда иммунная система кролика физически или психологически ослаблена, или нормальный уход за шерстью затруднен, могут возникнуть серьезные заражения, особенно у молодых или пожилых кроликов (Keeble, 2018).


    Рис. 1. Cheyletiella parasitovorax вызывает шелушение (любезно предоставлено Э. Киблом).

    Начальные клинические признаки могут быть легкими с небольшими пятнами сухой, белой, покрытой корками кожи между лопатками и распространяющимися вниз по позвоночнику. Если оставить для развития, состояние становится чрезвычайно раздражающим и зудящим для кролика с участками выпадения шерсти.

    Cheyletiella является зоонозом, и кожные поражения могут развиваться на руках, ладонях и шее владельца, особенно если он много берет кролика в руки. Поражения у людей, как правило, проходят после успешного лечения кролика (Keeble, 2018).

    Взрослые самки клещей могут жить за счет кролика в окружающей среде не менее 10 дней и способны переходить от кролика к кролику, распространяя инфекцию. Яйца прикрепляются к волосяным стержням, жизненный цикл длится 2–3 недели.

    Инфекции часто можно диагностировать по клиническим признакам без необходимости дальнейших диагностических тестов, но при необходимости можно взять оттиск мазка кожи или ацетатной ленты и исследовать его под микроскопом на наличие клещей и яиц.Клещи C. parasitovorax имеют округлую форму и большой когтеобразный ротовой аппарат. Взрослые имеют длину около 0,38 мм и восемь ног. Вместо когтей у них гребни.

    Ивермектин путем подкожной инъекции каждые 10 дней в течение трех обработок или селамектин, перметрин или ивермектин для местного применения для лечения клещей (Keeble, 2018). Местное лечение следует повторить через 10–14 дней после первой дозы, а также всех кроликов, находившихся в контакте. Окружающая среда должна быть тщательно очищена и продезинфицирована для предотвращения повторного заражения и выявления основной причины.Местный ивермектин лицензирован для использования у кроликов. Селамектин и инъекционный ивермектин используются без лицензии в рамках каскадной системы.

    Другим нероющим меховым клещом, встречающимся у домашних кроликов, является Leporacarus gibbus. В отличие от C. parasitovorax, клещ не является зоонозным. Обычно обнаруживаемые вокруг области крестца, клинические признаки наблюдаются только при тяжелых инвазиях, и при наблюдении они включают зуд и шелушение. Клеща можно увидеть невооруженным глазом, особенно у белых кроликов. Тела как самцов, так и самок овальные, с округлым спинным выступом, немного заходящим за ротовые органы.Ноги самца намного длиннее по отношению к телу, чем у самки. Лечение заключается в применении местных комбинированных препаратов селамектина или имидаклоприда и перметрина (Keeble, 2018). Имидаклоприд лицензирован для использования на кроликах, но не для этой цели, поэтому все продукты используются без лицензии в соответствии с каскадной системой.

    Psoroptes cuniculi, кроличий ушной клещ, представляет собой клещ, который не роет норы и может упоминаться как язва уха, особенно в старых учебниках по кроликам.На ранних стадиях клинические признаки могут ограничиваться случайным почесыванием ушей или тряской головы. По мере размножения клещей заражение будет распространяться от слухового прохода до ушной раковины. В этот момент корки будут обильными, и кролик, вероятно, будет страдать от сильного раздражения и тряски головой (Рисунок 2). Поражения кожи могут распространяться на лицо и шею, а барабанная перепонка может перфорироваться, что приводит к инфекции среднего уха с вторичным образованием гноя (средний отит) и, возможно, даже к менингиту (Keeble, 2018).


    Рисунок 2. Инфекция Psoroptes cuniculi (любезно предоставлено N Wissink-Argilaga).

    Зараженные кролики передают клещей другим кроликам при прямом контакте или при встряхивании головой, что позволяет яйцам и клещам загрязнять окружающую среду. Поэтому всех контактировавших с вирусом кроликов также необходимо лечить, даже если у них нет признаков инфекции.

    Лечение включает селамектин или моксидектин, оба не лицензированы в рамках каскадной системы. Эти клещи также могут распространяться на другие участки тела во время ухода (Wissink-Argilaga, 2017).

    Важно не удалять корки с ушей вручную (рис. 3). Как только клещи будут уничтожены, они исчезнут сами по себе. Попытка удалить их болезненна для кролика и может привести к повреждению слизистой оболочки ушного канала. Часто требуется обезболивание, особенно если состояние прогрессирует.


    Рисунок 3. Важно не удалять корки, вызванные Psoroptes cuniculi.

    Уборочный клещ (Trombicula fallalis) можно обнаружить у кроликов, живущих на открытом воздухе, или у кроликов, имеющих выход на улицу.Они чаще встречаются в конце лета или начале осени и выглядят как маленькие красные клещи. Поскольку они могут быть переносчиками миксоматоза, их важно своевременно предотвращать и лечить. Обычно их можно найти вокруг ушей и между пальцами ног, кролики подбирают их на пастбищах или с почвы. Ивермектин или перметрин могут быть эффективными средствами для лечения домашних кроликов, хотя имеется мало данных об их эффективности против клещей (Keeble, 2018).

    Demodex cuniculi был обнаружен в соскобах кожи, взятых у кроликов в Соединенном Королевстве (Harvey, 1990), хотя и не является обычным явлением.Пораженные кролики, по-видимому, не проявляют клинических признаков.

    Блохи

    Кроличья блоха (Spillopsyllyus cuniculi) встречается на домашних кроликах и является обычным переносчиком миксоматоза. Кошачья блоха (Ctenocephalides felis) и собачья блоха (Ctenocephalides canis) также могут встречаться у кроликов, живущих с собаками или кошками, или в зараженных помещениях (Варга, 2014).

    Блохи редко опасны для жизни, за исключением случаев, когда кролик очень молод или мал, или у него имеется значительное заражение, так как может возникнуть анемия.Живых блох можно не наблюдать, если заражение не прогрессирует, но грязь от блох в шерсти будет очевидна (Рисунок 4).


    Рис. 4. Блошиная грязь часто видна на шерсти (любезно предоставлено E Keeble).

    Можно использовать имидаклоприд или селамектин для местного применения. Селамектин используется без лицензии в рамках каскадной системы. Фипронил никогда не следует использовать у кроликов, поскольку сообщалось, что изопропаноловый носитель вызывает побочные реакции и даже смерть (Keeble, 2018).

    Клещи

    Клещи редко встречаются у домашних кроликов, поскольку они не часто посещают участки, которые легко передаются.Однако, если кошки или собаки в домашнем хозяйстве смешиваются с домашними кроликами, они являются возможным путем передачи инфекции.

    Клещи могут переносить вирус миксоматоза, и большое их количество может привести к анемии (рис. 5). Рекомендуется осторожное удаление клещей с помощью специального средства для удаления клещей и/или лечение подкожной инъекцией ивермектина (в рамках каскадной системы, без лицензии), а также определение пути передачи для исключения дальнейшего заражения.


    Рис. 5.Клещи могут переносить вирус миксоматоза (любезно предоставлено Джо Хинде).

    Вши

    Вши редко встречаются у кроликов, но кроличья вошь Haemodipsus ventricosus может вызывать раздражение и в больших количествах анемию. Лечение заключается в подкожных инъекциях ивермектина.

    Эндопаразиты

    Нематоды

    Несколько видов круглых червей могут поражать кроликов. Примеры включают Trichostrongylus retortaeformis, Graphidum strigosum, Obeslicoides cuniculi и Passalurus ambiguous (Harcourt-Brown, 2015), однако большинство из них встречаются только у диких кроликов.

    Наиболее распространенным из них, встречающимся у домашних кроликов, является P. ambiguous, часто называемый острицей или острицей. Они специфичны для кроликов и не являются зоонозными. Их не следует путать с человеческими нитчатыми червями, которые представляют собой совершенно другой вид.

    Считается, что червь непатогенен для взрослых кроликов и может играть роль в механическом перемешивании пищи в слепой кишке (Varga, 2014). Лечение следует начинать у молодых животных или при наличии клинических признаков, таких как потеря веса, взлохмаченная шерсть или комплекс энтерита.В качестве варианта лечения был предложен фенбендзол. Кролики передают гельминтов между контактирующими с ними кроликами, так как яйца и живые гельминты выделяются с фекалиями и цекотрофами. Они имеют длину от 0,5 до 1 см и часто остаются живыми при прохождении через них, но в течение нескольких минут черви высыхают и умирают. Поэтому дальнейшее распространение или повторное заражение является обычным явлением, поскольку кролики осуществляют копрофагию.

    Обычно кроликам не требуется рутинная дегельминтизация для профилактической борьбы с нематодами.

    Цестоды

    Кролики являются промежуточными хозяевами для нескольких ленточных червей, которые поражают собак и кошек, и домашние кролики, которые пасутся в садах, населенных домашними собаками, или посещаемых лисами, могут заразиться (Varga, 2014).Taenia serialis и Taenia pisiformis — наиболее распространенные ленточные черви, вызывающие образование цист у кроликов.

    Обычный путь заражения – проглатывание зараженного растительного материала, зараженного фекалиями собак или лисиц, зараженных цестодами.

    T. pisiformis образует цисты в брюшной полости, тогда как цисты T. serialis формируются в тканях под кожей (за глазом или на языке или мышцах). Вздутия, возникающие в результате образования кист, могут достигать значительных размеров и содержать сколисы (сегменты ленточного червя).Клинические проблемы наблюдаются из-за размера или расположения кист, и в этих случаях может потребоваться хирургическое удаление.

    Кокцидиоз

    У кроликов описаны две формы заболевания: кишечный и печеночный (печеночный) кокцидиоз. Тем не менее, сообщалось, что несколько видов этого паразита способны заражать кроликов (Mancinelli, 2015).

    Eimeria stiedae – вид, способный вызывать печеночный кокцидиоз. Остальные виды кокцидий (Eimeria unresidua, Eimeria magna, Eimeria perforans и Eimeria media, четыре основных вида у кроликов) обнаруживаются в тонком и толстом кишечнике и вызывают кишечный кокцидиоз (Mancinelli, 2015).Молодые кролики (до 8-недельного возраста) чаще болеют кишечной формой.

    Пища и вода заражаются ооцистами (яйцами) инфицированного кролика, которые затем проглатываются другим кроликом. Клинические признаки различаются и могут включать: диарею от перемежающейся до тяжелой, со слизью или кровью или без них; потеря веса; и обезвоживание. В тяжелых случаях смерть может наступить быстро из-за дисбактериоза кишечника. Печеночный кокцидиоз возникает, когда E. stiedae попадают из кишечника через желчь в печень и, в конечном итоге, с фекалиями (Mancinelli, 2015).Симптомы варьируются в зависимости от множества факторов, включая возраст кролика, паразитарную нагрузку и наличие паразита. Стресс также может определять вероятность появления у кролика клинических признаков. Многие кролики могут протекать бессимптомно, но когда проявляются клинические признаки, они могут включать: диарею; анорексия; вздутый живот; нарушение функции печени и обструкция желчи. Ооцисты бывает трудно отличить от других паразитов при исследовании фекалий под микроскопом, и они периодически выделяются.В случае смерти патологоанатомическое исследование может выявить поражения тонкой и/или толстой кишки или печени, в зависимости от вида пораженного паразита. Образцы гистологии пораженных органов также должны быть представлены для подтверждения. Было предложено несколько схем лечения для профилактики и лечения обеих форм (кишечной и печеночной) заболевания, связанного с кокцидиальной инфекцией. Тортразурил в настоящее время считается одним из препаратов выбора. В качестве альтернативы можно назначать специфические антибиотики с антикокцидийной активностью (Mancinelli, 2015).

    Заключение

    Существует множество паразитов, как эндопаразитов, так и эктопаразитов, поражающих кроликов. Некоторые из них протекают бессимптомно и могут играть роль в здоровом балансе желудочно-кишечного тракта кролика и не вызывают клинических признаков, когда кролик остается здоровым. Если иммунная система кролика по какой-либо причине нарушена или его общее состояние здоровья плохое, то некоторые из этих паразитов могут начать вызывать клинические признаки. Многие из них также передаются между кроликами и легко распространяются, поэтому лечение всех кроликов, находившихся в контакте, и тщательная очистка окружающей среды важны для снижения вероятности дальнейшего заражения.Большинство из них относительно легко диагностировать и эффективно лечить.

    Ключевые моменты

    • Многие паразиты переносятся кроликами субклинически и могут не вызывать клинических признаков.
    • Лечение может быть не лицензировано для использования на кроликах, но информация экстраполирована на основе того, что эффективно у собак и кошек.
    • Точная диагностика важна для обеспечения правильного лечения при первой же возможности.
    • Некоторые паразиты могут играть роль в здоровом балансе желудочно-кишечного тракта кролика.
    • Часто все контактировавшие с вирусом кролики нуждаются в лечении, даже если у них нет клинических признаков.
    Скачать сейчас

    Эктопаразиты насекомых диких воробьиных птиц на Азорских островах

    Паразит 27 , 64 (2020)

    Исследовательская статья

    Эктопаразиты насекомых диких воробьиных птиц на Азорских островах

    Insectes ectoparasites de passereaux sauvages aux Açores

    Люси Ослейскова 1 * , Сарка Коункова 1 , Даниэль Р.Густафссон 2 , Роберто Ресендес 3 , Педро Родригес 4 , Иван Литерак 1 и Олдрич Сихра 1

    1 Кафедра биологии и болезней диких животных, Факультет ветеринарной гигиены и экологии, Университет ветеринарных и фармацевтических наук Брно, ул. Палацкого. 1946/1, 61242 Брно, Чехия
    2 Гуандунская ключевая лаборатория сохранения и ресурсов животных, Гуандунская общественная лаборатория сохранения и использования диких животных, Гуандунский институт зоологии, 105 Xingang West Road, район Хайчжу, Гуанчжоу, 510260, Китай
    3 CIBIO, Centro de Investigação em Biodiversidade e Recursos Geneticos, InBIO Laboratorio Associado, Polo dos Açores, Universidade dos Açores, 9501-801 Понта-Делгада, Португалия
    4 Instituto de Patologia Animal, Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad Austral de Chile Isla Teja, 50

    Valdivia, Чили


    * Автор, ответственный за переписку: [email protected]ч

    Получено: 26 Август 2020
    Принято: 2 ноябрь 2020

    Аннотация

    Всего на наличие эктопаразитов исследовано 266 диких воробьиных птиц (Passeriformes), представляющих восемь видов и девять подвидов с трех островов Азорского архипелага. Два вида вшей Ornithomya avicularia и Ornithoica turdi (Diptera: Hippoboscidae), три вида блох Ceratophyllus gallinae , Ceratophyllus sp.и Dasypsyllus gallinulae (Siphonaptera: Ceratophyllidae), и 11 видов жевательной вшей, принадлежащих к родам Menacanthus, Myrsidea (Phthiraptera: пухопероеды), Ricinus (Phthiraptera: Ricinidae), Brueelia , Guimaraesiella , Были зарегистрированы Philopterus , Sturnidoecus и Turdinirmus (Phthiraptera: Philopteridae). Как минимум один вид эктопаразитов был обнаружен у 114 птиц шести видов.Переописаны Guimaraesiella tovornikae и Myrsidea sylviae из Sylvia atricapilla . Находки Ceratophyllus sp. и Sturnidoecus sp. из Turdus merula представляют собой новые ассоциации паразит-хозяин. Также обнаружена форезия Guimaraesiella amsel на Ornithoica turdi . Приведены такие паразитологические параметры, как распространенность, интенсивность и численность, а также географическое распространение зарегистрированных эктопаразитов.

    Резюме

    Всего 266 пассерообразных диких животных (Passeriformes) из трех островов архипелага Асор, представляющих huit espèces et neuf sous-espèces, в ходе исследований по поиску эктопаразитов. Deux espèces de mouches-araignées, Ornithomya avicularia и Ornithoica turdi (Diptera: Hippoboscidae), trois espèces de puces, Ceratophyllus gallinae , Ceratophyllus sp. и др Dasypsyllus gallinulae (Siphonaptera: Ceratophyllidae), и др Онзе espèces де mallophages appartenant Окс жанры Menacanthus, Myrsidea (Phthiraptera: пухопероеды), Ricinus (Phthiraptera: Ricinidae), Brueelia , Guimaraesiella , Philopterus , Sturnidoecus и Turdinirmus (Phthiraptera : Philopteridae) не сигнализируются.Au moins une espèce d’ectoparasite a été trouvée sur 114 oiseaux de six espèces. Guimaraesiella tovornikae и Myrsidea sylviae , de Sylvia atricapilla, , не отредактированные.

    Добавить комментарий

    Ваш адрес email не будет опубликован.